Cinétique enzymatique - Associations d`Étudiantes
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Travaux Pratiques Chimie Physique I Semestre d’automne 2007 Cinétique enzymatique ABEGG Daniel SURRIABRE Pedro Université de Genève Science II, Laboratoire 110 11 octobre 2007 Table des matières 1 Cinétique enzymatique 1.1 But de l’expérience . . . . . . . . 1.2 Partie théorique . . . . . . . . . . 1.2.1 Mécanisme de la réaction . 1.3 Partie pratique . . . . . . . . . . 1.3.1 Manipulations . . . . . . . 1.4 Résultats . . . . . . . . . . . . . . 1.5 Calculs d’erreurs . . . . . . . . . 1.6 Discussion et conclusion . . . . . 1.7 Sources bibliographiques . . . . . 1.8 Exercice . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 2 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3 3 3 4 4 5 6 8 9 9 9 Chapitre 1 Cinétique enzymatique 1.1 But de l’expérience L’objectif de cette expérience est d’étudier la cinétique de la réaction de décomposition du N-benzoyl-aginine-p-nitroaniline en mesurant la variation de l’absorbance du produit de la réaction (p-nitroaniline) en fonction du temps et à différentes concentrations du réactif. Finalement on veut déterminer la vitesse initiale, la vitesse maximale et la constante de Michaelisi-Menten correspondantes à cette réaction. 1.2 Partie théorique Pour la réaction de décomposition que nous allons étudier pendant ce TP, on suit le mécanisme de Michaelis-Menten qui propose l’équation suivante : V0 = Vmax [S] KM + [S] Où : V0 = vitesse initial de la réaction Vmax = vitesse maximal de la réaction [S] = concentration du substrat KM = constante de Michaelis-Menten Cependant, nous allons utiliser une forme différente de cette équation qui va nous permettre de déterminer les différentes constantes de la réaction : KM 1 1 = + V0 Vmax [S] Vmax Néanmoins, pendant cette expérience, ce qu’on va calculer directement est la variation 3 de l’absorbance par rapport au temps et non la vitesse de la réaction. On va avoir besoin d’une relation entre cette variation de l’absorbance en fonction du temps et la vitesse de réaction : A = clǫ dA dc = l ǫ = V0 l ǫ dt dt dA/dt est la variation de l’absorbance en fonction du temps V0 est la vitesse de la réaction l est la longueur de la cuvette = 1 cm ǫ est le coefficient d’extinction molaire de la p-nitroaniline = 104 M-1 cm-1 Ainsi on trouve une relation entre la variation de l’absorbance et la vitesse de réaction. 1.2.1 Mécanisme de la réaction O H O H N NO 2 N N OH Trypsin ( CH 2) 3 O H ( CH 2) 3 O + H 2O NH NH NH 2 H 2N NH H 2N N−benzoyl−arginine−p−nitroanilide (BAPNA) 1.3 NH p−nitroaniline (jaune) Partie pratique Solution mère de BAPNA mBAP N A dans 40 ml de DMSO = c V MM = 0.06 mol/Lt · 0.04 Lt · 439.89 g/mol = 1.0437 g 4 Prépartion des solutions Les solutions suivantes sont préparées à partir de la solution mère Solutions Concentration [M] A 0.003 B 0.006 C 0.009 D 0.012 E 0.015 F 0.021 G 0.042 H 0.060 1.3.1 VBAP N A [ml] 0.25 0.50 0.75 1.00 1.25 1.75 3.50 5.00 VDM SO [ml] 4.75 4.50 4.25 4.00 3.75 3.25 1.50 0.00 Manipulations La solution mère de BAPNA, de l’enzyme, du DMSO et du tampon (pH=8) ont été préparé par l’assistante. Nous avons 2 séries de 8 cuvettes qui seront pour la première, de blanc et la deuxième, la solution à mesurer (absobance). Dans les cuvettes à blanc, il y a 2.5 ml du Tampon et 0.5 ml d’une des 8 solutions cidessus. Dans les autres 8 cuvettes il y a 2.5 ml d’enzyme et 0.5 ml d’une des 8 solutions. Les cuvettes sont secouées une à une au fur et à mesure avec du parafilm car une fois la solution ajoutée dans l’enzyme la réaction commence. L’absorbance est mesurée par ordre croissant de concentration. Pour mesurer l’absorbance (400 nm) il faut d’abord calibrer le spectromètre avec une solution à blanc puis insérer la solution à mesurer, qui possède la même concentration. Les mesures se font sur une période de 5 minutes. 5 1.4 Résultats Solutions [BAP NA] [mol/L] A 0.003 B 0.006 C 0.009 D 0.012 E 0.015 F 0.021 G 0.042 H 0.060 [S] [mol/L] 5.0 10−4 1.0 10−3 1.5 10−3 2.0 10−3 2.5 10−3 3.5 10−3 7.0 10−3 1.0 10−2 1/[S] 2.00 103 1.00 103 6.67 102 5.00 102 4.00 102 2.86 102 1.43 102 1.00 102 Pente [Abs/min] 0.0451 0.0807 0.1185 0.1423 0.1731 0.2232 0.3970 0.5611 V0 (exp) 10−6 [mol/min] 4.510 8.070 11.85 14.23 17.31 22.32 39.70 56.11 1/V0 (exp) 221729 123916 84388 70274 57770 44803 25189 17822 Lineweaver - Burk plot 1/V0 [min/mol] 200000 150000 f (x) = 106.085 x + 13170.6 R2 = 0.9966 100000 50000 −1/KM 1/Vmax 0 0 500 1000 1500 1/[S] [L/mol] Vmax = 7.593 10−5 [mol/min] KM = 8.055 10−3 [mol/L] ∆KM = 2 10−4 [mol/L] 6 2000 2500 Solutions [S] [mol/L] A 5.00 10−4 B 1.00 10−3 C 1.50 10−3 D 2.00 10−3 E 2.50 10−3 F 3.50 10−3 G 7.00 10−3 H 1.00 10−2 8e−05 V0 (exp) 10−6 [mol/min] 4.510 8.070 11.85 14.23 17.31 22.32 39.70 56.11 V0 (th) 10−6 [mol/min] 4.438 8.385 11.92 15.10 17.98 23.00 35.30 42.05 Vmax V0 (th) [mol/min] 7e−05 Vmax /2 6e−05 5e−05 f (x) = 1.295 10−5 ln(x) + 9.821 10−5 R2 = 0.9517 4e−05 3e−05 2e−05 KM 1e−05 0 0 0.01 0.02 0.03 [S] [mol/L] Vmax = 7.00 10−5 [mol/min] KM = 7.60 10−3 [mol/L] ∆KM = 5.16 10−4 [mol/L] 7 0.04 0.05 1.5 Calculs d’erreurs Objet Seringue Pipette Pipette Pipette Pipette Fiole Volume [ml] 0.5 1.0 2.0 2.5 5.0 5.0 erreur [ml] 0.01 0.02 0.02 0.02 0.02 0.08 Concentrations des solutions Ci Vi = Csol Vsol Csol = C i Vi Vsol ln(Csol ) = ln C i Vi Vsol = ln(Ci ) + ln(Vi ) − ln(Vsol ) dCi dVi dVsol dCsol = + − Csol Ci Vi Vsol Vsol = Vi + VDMSO ∆Csol ∆Ci ∆Vi ∆Vi + ∆VDMSO = + − Csol Ci Vi Vi + VDMSO Concentrations des solutions dans les cuvettes ∆Csol ∆Vsol ∆Vsol + ∆Vajouté ∆Ccuv = + − Ccuv Csol Vsol Vsol + Vajouté Erreurs Solutions A B C D E F G H ∆Csol [mol/L] 2 10−4 2 10−4 3 10−4 3 10−4 5 10−4 7 10−4 1 10−3 1 10−3 8 ∆Ccuv [mol/L] 4 10−5 7 10−5 9 10−4 1 10−4 2 10−4 2 10−4 4 10−4 5 10−4 ∆KM = moyenne(∆Ccuv ) = 2 10−4 [mol/L] Pour l’erreur de KM du log plot, il faut multipiler l’erreur des ∆Ccuv par leurs propres [S], faire la moyenne et multiplier par le KM trouvé. Donc : ∆KMlog = 5.16 10−4 [mol/L] 1.6 Discussion et conclusion Nous observons comme attendu que plus la solution est concentrée en BAPNA plus la couleur devient jaune et donc la pente de l’absorbance augmente. Les valeurs de constantes Vmax et KM ne sont pas trop différentes entre les 2 graphiques mais les valeurs du lineweaver plot sont probablement plus correcte car pour la rérgésion logarithmique, la courbe n’est pas très bien superposée aux erreurs calculées. 1.7 Sources bibliographiques Protocole des travaux pratiques de chimie physique I 1.8 Exercice Dans une cocotte-minute, la pression peut monter jusqu’à 2 bar. Sous cette pression, l’au bout à 121˚C. Si l’on observe que les pommes de terre sont cuites deux fois plus rapidement qu’à pression normale (1 bar), estimer l’énergie d’activation pour la réaction de la cuisson des pommes de terre. On pose d’abord l’équation d’Arrhenius : Ea 1 1 k′ − ′ ln( ) = k R T T Où : k’ et k sont des constantes de vitesse à une température donnée Ea est l’énergie d ?activation R est la constante universelle des gaz T et T’ sont les températures correspondantes aux constantes de vitesse. 9 Dans le problème on nous dit que la vitesse de cuisson est 2 fois plus vite à 121˚C qu’à 100˚C, donc on va considérer que le rapport des constantes de vitesse est égal à 2 : k′ ln( ) = ln(2) k T = 100˚C = 373 K T ′ = 121˚C = 394 K Ea = R ln(2) = 40.33 kJ/mol 1 − T1′ T On obtient bien une valeur positive qui indique qu’il faut fournir de la chaleur au système pour pouvoir cuire les pommes de terre. 10
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D’après la littérature [2], la constante de Michaelis est égal à 2.20 mM. La valeur déterminée graphiquement
est 1.57 mM, ce qui donne une erreur relative de 28.6 %.