C2 ENR04 02 Manuel de prélèvement révision 21.11.2014

Transcription

C2 - ENR 04 Version 02
Manuel de prélèvement
LABORATOIRES D’ANALYSES MEDICALES
Rédigé par Mr TELLIER responsable qualité
Approuvé par les Biologistes des laboratoires BCD Biologie
C2-ENR04-02 Manuel de prélèvement
Date d’application : 17/01/2012
Révision :21/11/2014
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La Selarl BCD Biologie regroupe les laboratoires d’analyses de biologie médicale des sites de
Chantilly, de Lamorlaye, de Montataire, de Nogent sur Oise et de Senlis. Elle propose à sa clientèle
des examens de biologie humaine polyvalente et spécialisée.
Ce manuel de prélèvements a été rédigé pour améliorer, de façon continue, les échanges entre les
préleveurs internes/externes et les laboratoires de la société BCD Biologie. Ceci, tout en respectant
les exigences du Guide de Bonne Exécution des Analyses de biologie médicale et de la norme NF
EN ISO 15189 « Laboratoire d’analyses de biologie médicale : Exigences particulières concernant la
qualité et la compétence ».
Cette version comporte un éventail très large des analyses réalisables par les laboratoires de la
société BCD Biologie. Ce Manuel, sans être exhaustif se veut le plus complet possible afin de vous
offrir le meilleur service pour la prise en charge de nos patients communs.
Une large place a été faite aux recommandations pré-analytiques. Le respect de cette étape est
primordial pour donner aux résultats d’analyses toute la qualité que nos patients et prescripteurs sont
en le droit d’attendre.
Votre aide et votre participation à cette étape, dans le respect des recommandations sont garantes
pour le patient et le prescripteur d’un résultat fiable et juste.
La mise à jour de ce manuel est annuelle. En cas de modifications majeures, une mise à jour
ponctuelle peut être diffusée à l’ensemble des préleveurs.
Les exemplaires des Manuels de prélèvements diffusés sont en diffusion non contrôlée.
Il vous est toujours possible de contacter les laboratoires pour toutes informations complémentaires.
Nous sommes également attentifs à toutes remarques ou suggestions de votre part qui aideraient à
l’amélioration de ce document.
Nous souhaitons que cette édition du Manuel corresponde à vos attentes, vous apporte une aide
utile et précieuse dans votre pratique professionnelle quotidienne, vous permette une efficace prise
en charge de nos patients et de répondre à quelques une de leurs questions.
La Direction
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SOMMAIRE
Présentation des laboratoires
04
Recommandations pré-analytiques
05
Exécution de la prescription
06
Déroulement du prélèvement
06
Lavage des mains
08
Conduite à tenir en cas d’incident et d’accident de prélèvement
10
Analyses nécessitants l’obtention de renseignements particuliers
11
Identification des échantillons et la fiche de prélèvement
12
Exemple de fiche de transmission de prélèvement
13
Le matériel et préconisations (choix des tubes)
14
Ordre des tubes
17
Autres matériels
18
Liste des analyses du laboratoire
20
Analyses complémentaires
27
Transport et conservation des échantillons
31
Elimination des déchets
32
Transmission des résultats
32
Annexes
33
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PRÉSENTATION
PR SENTATION DES LABORATOIRES BCD BIOLOGIE
LABORATOIRE NOGENTAIS (SIEGE SOCIAL)
Dirigeant : Dr BENMUSSA
01, rue Gambetta
Ouverture
60180 NOGENT sur OISE
Lundi au Vendredi de 7h30 à 12h00 - 13h30 à 18h00
tél : 03 44 74 38 50 fax : 03 44 74 38 59
Samedi de 7h45 à 12h00
LABORATOIRE SENLISIEN
Dirigeant : Dr COURGENAY
05, avenue du Général Leclerc
60300 SENLIS
tél : 03 44 32 31 00 fax : 03 44 53 67 89
Ouverture
LABORATOIRE MONTATAIRE
Dirigeant : Mr CHEVALLIER
88, rue Jean Jaurès
60160 MONTATAIRE
tél : 03 44 26 11 26 fax : 03 44 25 36 07
Ouverture
LABORATOIRE LAMORLAYE
Dirigeant : Mr SAINTE-MARIE
12-14, rue du Général Leclerc
60260 LAMORLAYE
tél : 03 44 21 41 41 fax : 03 44 21 40 25
Ouverture
LABORATOIRE CHANTILLY
Dirigeant : Mme SORNICLE-POULET
18, rue Victor Hugo
60500 CHANTILLY
tél : 03 44 58 03 58 fax : 03 44 57 65 02
Ouverture
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RECOMMANDATIONS PRÉPRÉ-ANALYTIQUES
État de jeûne
POURQUOI LE PATIENT DOIT-IL ETRE A JEUN ?
Certains dosages varient après le repas parce que l’alimentation apporte elle-même certains des
éléments dosés (ex : triglycérides, glucose…). Par ailleurs, après un repas, la qualité du sérum ou du
plasma est modifiée (trouble, viscosité).
Ces modifications de la qualité des prélèvements peuvent perturber le fonctionnement des appareils
d’analyse de plus en plus sensibles et précis.
De manière générale, le jeune est recommandé pour l’ensemble des analyses.
Une période de jeûne strict est indispensable pour le dosage de la glycémie, des triglycérides,
du cholestérol et des apolipo protéines (recommandation de 12 heures).
Si le jeun est précisé sur l’ordonnance toujours le respecter
Prescription urgente
Les urgences seront traitées en priorité dans le seul cas où la mention en est faite par le prescripteur
lui même ou dans le cadre d’une convention tacite avec un établissement de soins.
Dosage de médicaments
Conformément à la nomenclature des actes de biologie médicale chaque résultat d’un dosage de
médicament doit mentionner:
- L’âge, la taille, le poids du sujet lorsque cela est possible
- Les raisons de la prescription : recherche d’efficacité et/ou de toxicité
- La date de début du traitement et/ou de l’éventuelle modification de la posologie
- Les renseignements posologiques (nom du médicament, dose journalière, date et heure de
dernière prise, date et heure de prélèvement, voie d’administration)
Urines
Toujours vérifier l’identification du flacon sinon demander au patient d’identifier le flacon.
Régimes alimentaires
La consommation de certains aliments peut influencer de manière significative les résultats
d’analyses. Un régime alimentaire peut être préconisé dans certains cas (exemples : VMA,
Cathécholamines…). A vérifier pour toutes les demandes d’analyses spécialisées.
Analyses génétiques
Exemples : HLAB27, Hémochromatose, Mutation du facteur V….. Les renseignements cliniques du
médecin sont nécessaires et le consentement est obligatoire.
Autres Analyses
Certaines analyses ne peuvent être traitées la veille de week-end end et de jours fériés.
Certains prélèvements ne peuvent être effectués qu’au laboratoire, car ils doivent être préparés
rapidement (congélation, centrifugation, défécation…) ou les analyses associées doivent être
exécutées rapidement.
Facturation / Prise en charge
Les informations suivantes sont nécessaires : Ordonnance dans tous les cas
Patient (adresse, téléphone), Service, Sécurité social, Mutuelle…
En l’absence des informations permettant la prise en charge du tiers payant, une note
d’honoraire est envoyée au patient.
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EXÉCUTION DE LA PRESCRIPTION
Tout acte réalisé par les laboratoires répond à la prescription d’un médecin.
Tout prélèvement et échantillon doit être accompagné de son ordonnance.
En cas d’absence d’ordonnance (demande du patient), un formulaire doit être complété par le patient
et accompagnera le prélèvement (cf. annexes Formulaire Enregistrement des demandes formulées
oralement).
Certaines analyses très spécialisées ne sont pas réalisées par nos laboratoires. Elles sont soustraitées par des laboratoires spécialisés sélectionnés et évalués par nos soins.
L’envoi des prélèvements est effectué par nos laboratoires.
Lorsqu’une analyse est sous-traitée, le patient en est informé.
Lorsqu’une analyse est transmise au laboratoire spécialisé, se reporter au guide du laboratoire
spécialisé pour prendre connaissance des conditions de prélèvement, choix des tubes et conditions
de conservation des échantillons. Si vous ne possédez pas ce guide, veuillez contacter le
laboratoire pour tout renseignement.
La liste des analyses mentionnées dans ce Manuel sont réalisées par les laboratoires de la
société BCD Biologie
Les résultats de la majorité des analyses exécutées par les laboratoires de la société BCD Biologie
sont disponibles dans la journée. Les délais de réalisation technique annoncés par ce manuel ne
sont pas contractuels. Les délais ne tiennent pas comptent des dimanches et jours fériés, ni de
contrôle(s) ou d’examen(s) complémentaire(s).
En cas d’urgence médicale, les examens du patient sont traités en priorité et les résultats sont
rendus le plus rapidement possible. Les secrétaires et le personnel préleveur, à votre demande,
peuvent vous informer sur les délais d’obtention des résultats.
DÉROULEMENT DU PRÉ
VEMENT
PRÉLÈVEMENT
Responsabilités
Préleveur
Préleveur
Préleveur
Préleveur
Actions
Vérification de l'identité et de la
conformité des conditions de prélèvement
Moyens / Méthodes
Noter les informations nécessaires à
la bonne interprétation des
résultats sur la fiche de suivi médical
Préparation des tubes ou des écouvillons
Réalisation du prélèvement
et identification
Information du patient sur le délai de
rendu des résultats
Selon les modes opératoires de
prélèvement en notant sur chaque
échantillon : Nom + Prénom + sexe
+ date de naissance
+ date de prélèvement
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OBJECTIF
Réaliser un prélèvement de qualité dans des conditions d’hygiène et de sécurité pour le
patient et le personnel.
PREALABLES
- Installer la personne confortablement. Le prélèvement doit être effectué sur un sujet au
repos. Selon son état, le patient est prélevé en position assise ou allongée. Le préleveur le
rassure et l’informe sur les conditions de prélèvement.
- Vérifier son identité (nom, prénom, nom de jeune fille, sexe, date de naissance).
- Vérifier la validité de la prescription médicale et s’assurer de la concordance entre l’identité
du patient et celle figurant sur la prescription.
- Procéder à l’interrogatoire nécessaire en fonction de la prescription permettant de compléter
la fiche de suivi médical (cf. analyses nécessitant l’obtention de renseignement particuliers).
- Vérifier la conformité des conditions de prélèvement : État de jeûne, dernière prise de
médicaments, périodes de repos pour les paramètres le nécessitant…
- Moment de prélèvement : idéalement entre 07h et 10h le matin à jeun pour obtenir des
résultats d’analyses qui soient comparables au cours du temps. En effet, rythme circadien,
alimentation, effort musculaire, influencent de nombreux paramètres sanguins.
- Choisir le matériel adapté au type de prélèvement (tubes, aiguilles, dispositifs de
prélèvement) et au malade (cf. matériels et préconisations, choix des tubes…). Le choix des
tubes à prélèvements est réalisé (nature, contenance et nombre) en fonction des analyses
prescrites et du système veineux observé.
- Vérifier la date de péremption du matériel.
DEROULEMENT DE L’ACTE
- Réaliser un lavage des mains ou une désinfection par friction avec un produit hydroalcoolique.
- Réaliser l’antisepsie en respectant le temps de contact.
NB : Si prélèvement pour une alcoolémie, utiliser un antiseptique non alcoolique.
- Poser le garrot afin de favoriser une vasodilatation veineuse
Garrot : pas trop serré, placé à 10 cm au dessus du point de ponction et maintenu pas plus
d’une minute car la stase due au garrot provoque une hémoconcentration locale, due à une
augmentation de la filtration de la phase aqueuse au travers des parois des vaisseaux
capillaires.
- Réaliser le prélèvement. Eviter de demander au patient de fermer et ouvrir sa main en
cadence (pompage), car la contraction des muscles entraîne une libération de potassium et
une augmentation de la kaliémie.
- Respecter le volume de remplissage du tube (obligation de remplissage pour le tube
citraté bleu)
- Réaliser le prélèvement en respectant l’ordre des tubes (cf. Ordre de prélèvements des
tubes) : Il est impératif, afin d’éviter des interférences par transfert des additifs entre les tubes
via l’aiguille ou le bouchon, d’utiliser les tubes dans un ordre défini lors des prélèvements.
- Eliminer l’ensemble du matériel de prélèvement dans les collecteurs adaptés au plus près du
geste immédiatement après le prélèvement. Le recapuchonnage est interdit.
- Réaliser l’identification de l’échantillon
- Réaliser un lavage simple des mains ou une désinfection par friction avec un produit hydro
alcoolique
- Identifiez-vous (enregistrement de l’acte de prélèvement et du préleveur)
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LAVAGE DES MAINS
Indication du lavage des mains
La main est le principal mode de transmission de micro-organismes. Le lavage des mains est un
préalable absolu avant la réalisation d’un prélèvement de biologie médicale et se réalise devant le
patient.
Il est inhérent à la manipulation des produits biologiques. Ce lavage limite les risques d’infections
nosocomiales par manu portage.
Les manches doivent être courtes ou relevées. Les mains et les poignets ne doivent porter aucun
bijou (ni alliance, ni montre…).
Les ongles doivent être courts et sans vernis.
Ce lavage doit être réalisé aussi souvent que nécessaire.
Les 5 indications à l’hygiène des mains selon l’OMS sont les suivantes :
1 - Avant le contact avec le patient
2 - Avant le geste aseptique
3 - Après le risque d’exposition à un liquide biologique
4 - Après le contact patient
5 - Après le contact avec l’environnement du patient
Protocoles de lavage des mains
Lavage par friction des mains avec produit hydro-alcoolique (PHA)
La friction des mains est un protocole simple à appliquer puisque les gels hydro-alcooliques sont
disponibles à tout moment, sans avoir besoin de point d’eau avec équipement. C’est une technique
rapide qui ne nécessite que 30 secondes.
L’efficacité des solutions hydro-alcooliques en termes d’élimination de la flore transitoire et
résidente portée sur les mains est, dans les conditions d’utilisation recommandées, au moins
équivalente et souvent supérieure à celle du lavage des mains effectué avec un savon doux ou
même un savon antiseptique.
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Un lavage hygiénique doit être réalisé à la place d’un lavage des mains par friction avec PHA dans
les cas suivant :
- Mains souillées et ou mouillées.
- Contact avec du sang ou un liquide biologique, y compris en situation d’accidents
d’exposition au sang ou aux liquides biologiques.
- Contact avec des matières organiques…
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CONDUITE A TENIR EN CAS D’INCIDENT ET D’ACCIDENT
D’ACCIDENT DE
PRÉ
VEMENT
PRÉLÈVEMENT
Incident ou
Accident
Cause
Conduite à tenir
Malaise du patient
qui reste cependant
conscient
Anxiété, jeûne,
…
Rassurer le patient.
Arrêter le prélèvement et faire comprimer par le patient le point de
prélèvement.
Incliner le dossier du fauteuil de manière à ce qu’il soit le plus allongé possible
Relever les jambes du patient de manière à ce qu’elles soient plus hautes que
la tête et le couvrir si nécessaire
Eviter la perte de connaissance en retenant l’attention du patient
Faire prévenir un biologiste ou un personnel titulaire de l’AFGSU sans laisser
le patient seul.
Noter l’incident sur la fiche de prélèvement
Hématome au point
de prélèvement
Garrot
trop
serré,
veine
trop fine, piqûre
hésitante…
Rassurer le patient.
Compresser le point de prélèvement
Poser une compresse alcoolisée
Perte de
connaissance du
patient
Anxiété, jeune
+
causes
médicales
Arrêter le prélèvement,
Incliner le dossier du fauteuil de manière à ce qu’il soit le plus allongé possible
Relever les jambes du patient de manière à ce qu’elles soient plus hautes que
la tête et le couvrir si nécessaire
Faire prévenir un biologiste ou un personnel titulaire de l’AFGSU sans laisser
le patient seul. Si nécessaire appeler le 15
Remarque : en cas de crise d’épilepsie prendre toutes les précautions
nécessaires pour éviter que le patient ne se blesse.
Noter l’incident sur la fiche de prélèvement
AES Conduite à tenir en cas d’accident avec exposition au sang
Situation
Action
Rincer abondamment avec le sérum physiologique pendant environ 10
min.
Projection d’échantillon biologique
Retirer si c’est le cas, les lentilles de contact
dans les yeux
Instiller un collyre antiseptique
Consulter un ophtalmologue le plus rapidement possible
Projection d’échantillon biologique sur les Rincer abondamment pendant 5 min sous l’eau
muqueuses
Désinfecter avec du Dakin ou du Polyvidone
Ne pas faire saigner la blessure,
Nettoyer la plaie à l’eau courante et au savon.
Piqûre, blessure cutanée ou projection sur Rincer
peau lésée
Tremper ou imbiber la zone blessée dans ou avec un antiseptique pendant
10 min. (Dakin, solution de javel à 9° diluée au 1/ 5, ou à défaut Bétadine
dermique jaune pure ou alcool à 70°)
• Déclaration de l’accident : La déclaration d’accident de travail doit être effectuée dans les
24 heures auprès de la médecine du travail. Un médecin doit être consulté immédiatement
afin d’évaluer le risque infectieux et envisager la mise en place d’un traitement
prophylactique anti-viral.
• Suivi sérologique et clinique, après avis médical et en fonction du contexte clinique.
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ANALYSES NÉ
NÉCESSITANT L’OBTENTION DE
RENSEIGNEMENTS PARTICULIERS ET CONDITIONS A
RESPECTER
Catégorie d’analyses
Renseignements à obtenir et conditions particulières à respecter
Bactériologie et virologie
Origine du prélèvement
But de l’analyse (diagnostic étiologique, choix ou suivi d’une antibiothérapie,
contrôle d’efficacité thérapeutique).
Signes cliniques.
Traitement en cours ?
Immuno-dépression ?
Voyage ?
Parasitologie et mycologie
Hémocultures
Dosage de médicaments
Groupe Sanguin
et agglutinines irrégulières
Chimie
Hormonologie
Hémostase
Marqueurs
Génétique
Analyses hors nomenclature
Origine géographique.
Déplacements et séjours effectués (date et durée).
Traitement anti-parasitaire en cours ?
Immuno-dépression ?
Antécédents pathologiques ?
Principaux signes cliniques.
Température, date et heure du prélèvement.
Renseignements cliniques.
Celles-ci doivent être prélevées lors d’un pic thermique et transmises dans les
plus brefs délais au laboratoire. Si transmission immédiate impossible, maintenir
les flacons à 37°C.
Date de début de traitement.
Posologie, fréquence et mode d’administration du médicament.
Date, heure et posologie de la dernière prise.
Heure de prélèvement.
Nom de jeune fille obligatoire.
Injection d’immunoglobulines anti-D (Rophylac) ?
Un jeûne de 12 heures est recommandé pour la glycémie et les bilans lipidiques.
Poids et âge pour la créatinine.
Origine ethnique pour Electrophorèse de l’hémoglobine et calcul MDRD DFG.
Date des dernières règles (pour βHCG, FSH, LH, progestérone, oestradiol).
Traitement Levothyrox ou Neomercazole (pour T3L, T4L, TSH).
La concentration de certaines molécules varie en cours de journée. Ces variations
sont bien connues pour certaines hormones : cortisol, prolactine, TSH : prélèvement
de préférence le matin.
Temps de repos de 15 min avant le prélèvement pour les prolactines
Nom de l’anticoagulant, posologie, date et heure de dernière prise.
Aucune analyse ne pourra être réalisée sur un tube mal rempli ou coagulé.
(volume de remplissage indiqué sur les tubes)
Prise en charge limitée au suivi thérapeutique : traitement en cours, pathologie.
Absence de toucher rectal depuis 48h ?
Consentement obligatoire (cf. annexes)
Consentement du patient.
CONSIGNES POUR LES RECUEILS REALISES PAR LE PATIENT LUI-MEME
Afin de garantir la qualité des échantillons recueillis par les patients eux-mêmes, les modalités
opératoires à suivre doivent leur être transmises par oral et par écrit.
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IDENTIFICATION DES ÉCHANTILLONS ET LA FICHE DE
PRÉ
VEMENT
PRÉLÈVEMENT
Identification des prélèvements
Selon la législation en vigueur, applicable à tous les prélèvements et correspondants (même externe
au laboratoire) il est impératif de noter sur tous les tubes et flacons de prélèvements:
- le nom
- le prénom
- le sexe
- la date de naissance
- la date et heure du prélèvement
- le nom de jeune fille pour les groupes sanguins.
Rq : La date et heure de prélèvement doivent être mentionnées. Elles peuvent être indiquées sur la
fiche de prélèvement de biologie médicale.
Ces indications doivent être indiquées (parfaitement lisibles), par la personne effectuant le
prélèvement, directement sur le contenant (tube, flacon, écouvillon…) ou via une étiquette
prévue à cet effet dans ce cas ne pas cacher l’intérieur du tube avec l’étiquette.
Les renseignements utiles à la bonne interprétation des résultats sont demandés par le préleveur et
sont reportés sur une fiche de suivi médical ou sur fiche de prélèvement (bon demande d’analyses
biologiques) pour les prélèvements effectués par un professionnel de santé (médecins, infirmiers, y
compris ceux exerçant dans un établissement de santé).
L’absence ou l’erreur d’identification du prélèvement ou de l’échantillon constitue un critère
de non-conformité, est enregistrée comme telle dans le Système Qualité du laboratoire et peut
entraîner la non exécution des actes ou apparaître en commentaire sur le compte rendu de
résultats.
Dans le cadre de la détermination d’un groupe sanguin, une absence ou une erreur
d’identification des prélèvements pourra faire l’objet d’une déclaration d’hémovigilance
auprès des autorités.
Fiches de prélèvements
Elles sont obligatoires. Elles sont mises à disposition par le laboratoire.
Les compléter. Y préciser tous renseignements cliniques et thérapeutiques susceptibles d’aider à la
compréhension des résultats des analyses.
Les informations suivantes correspondent aux données minima nécessaires pour permettre un
enregistrement complet du dossier et la réalisation correcte des analyses :
Préleveur : Nom, date et heure du prélèvement
Important : Conformément à la législation, le préleveur doit s’identifier.
Les préleveurs pratiquant dans les laboratoires s’identifient à partir du formulaire de traçabilité des
préleveurs. Les préleveurs externes s’identifient sur la fiche de suivi médical.
Patient :
· NOM PRENOM Date de naissance
· NOM de jeune fille si groupe sanguin ou recherche d’agglutinines irrégulières
· Pour les nouveaux patients :
- Adresse complète
- N° de téléphone
- centre et N° de sécurité sociale (nom de l’assuré )
- mutuelle avec N° d’adhérent
· Mode de transmission des résultats : A poster, faxer ou A garder au labo
· Renouvellement d’ordonnance
· Caractère d’urgence du prélèvement
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Exemple de Formulaire Fiche de transmission de prélèvement
Date de mise en application :01/09/2004
ENVOI DU PRELEVEMENT (à remplir par le préleveur)
IDENTIFICATION DU PATIENT
Nom et prénom : ______________________________________
Adresse : _____________________________________
Nom de naissance : ____________________________________
Sexe : M F
Date de naissance :___________
Traitement : ____________________________
Posologie ____________________
Poids si créatinine :
kg
PRESCRIPTEUR ET CARACTERISTIQUE DE LA PRESCRIPTION
Voir prescription
absence de prescription (dans ce cas renseigner les informations ci-dessous)
Médecin prescripteur______________________________________ Qualité : généraliste Spécialiste : _____________
Adresse_________________________________________________ Date de la prescription___________________________
Examens demandés :
PRELEVEMENT
TAMPON DU PRÉLEVEUR
Prélèvement effectué le___________ à _____h____ Nombre d'échantillons_______
OU DE L’ETABLISSEMENT
DE SANTE
Site de prélèvement : pli du coude autres :___________________________
Nature : sang urines autres : _________
Matériel de prélèvement utilisé:
Conditions de prélèvement :
Dispositif sous vide Dispositif à écoulement libre Seringue
Pots stériles
Pots non stériles
Ecouvillons
Autres : ____________________
à jeun non à jeun horaires respectés
Autres : _____________________
TRANSMISSION
A renseigner si la transmission est réalisée par une personne autre que celle qui a prélevé
Nom : ______________________________
Qualité : coursier
autre : _________
Date ________
Heure______
Adresse_______________________________________________________________________________________________
Conditions de transmission : normales Réfrigérées Congelées
IDENTIFICATION DE
IDENTIFICATION DE
L’EXPEDITEUR
LA PHARMACIE
Nom et adresse
IDENTIFICATION DU
DESTINATAIRE
Nom et adresse
Nom et adresse
RECEPTION AU LABORATOIRE
PERSONNE QUI RECEPTIONNE ET OBSERVATION A RECEPTION
Nom : ______________________________
TAMPON DU
LABORATOIRE
Qualité : technicien
Nature : sang
secrétaire
Date_____________ Heure___________
biologiste
autre : ______________
urines autres : ______________________
Conformité des échantillons à la réception : oui non (dans ce cas voir ci-dessous)
Concordance des échantillons et documents transmis et reçus non
Intégrité de l’emballage : non
Respect du délai de transmission : non
Conformité de l’étiquetage : non Respect de la température de transmission : non
Autres remarques du laboratoire concernant l’échantillon transmis :
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LE MATÉ
MATÉRIEL ET PRÉ
PRÉCONISATIONS
Tubes secs
Application : Permet l’obtention de sérum.
Ce tube permet l’obtention de sérum.
Recommandations d'utilisation :
Homogénéisation : dès le retrait du corps de prélèvement par 8-10 retournements lents
Délai avant centrifugation : 60 min (pour un patient sans traitement anticoagulant)
Tubes avec Fluorure de sodium et EDTA de sodium
Application : Permet l’obtention de plasma. Le Fluorure de sodium est un inhibiteur de la glycolyse.
Ce tube est destiné aux dosages de glucose, alcool et lactates.
Délai avant centrifugation : Néant
Tubes avec EDTA K3
Application : Permet l'obtention de sang total ou de plasma.
Ce tube est destiné aux tests d'hématologie cellulaire.
Tubes avec Héparine de Sodium
Application : Permet l’obtention de plasma hépariné.
Tubes avec Citrate de sodium pour tests de coagulation
Application: Permet l’obtention de plasma citraté ou sang total.
Ce tube est destiné aux tests de coagulation.
Tubes avec gel séparateur
Application : Permet l’obtention d’un échantillon de sérum dans un délai de 5 min après
prélèvement.
Tube destiné aux activités d’urgence ou aux laboratoires souhaitant travailler sur sérum et avoir un
délai court entre le prélèvement et l’analyse.
Homogénéisation : IMMEDIATE dès le retrait du corps de prélèvement par 8-10 retournements
lents
Délai avant centrifugation : 5 min (pour un patient sans traitement anticoagulant)
Cas des prélèvements difficiles
Votre laboratoire dispose pour des prélèvements difficiles de tubes spécifiques pour le recueil de
faible quantité d’échantillon sanguin (tubes pédiatriques).
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Quantité nécessaire/idéale de tubes pour la bonne exécution de la demande d’analyses
Hématologie
NFS, VS, réticulocytes, recherche hématozoaires
Electrophorèse de l’Hémoglobine
Groupe sanguin, RAI
HbA1c
BNP
1 tube
1 tube
1 tube / détermination
1 tube
1 tube
Hémostase
TP, TCA, Fibrinogène
Si facteurs de la coagulation
1 tube
1 tube
Biochimie
> 20 paramètres
Ammoniémie
2 tubes
1 tube
Immunochimie
> 5 marqueurs
2 tubes
Si marqueurs tumoraux, prélever si possible un tube avec gel séparateur SST
Hormonologie
FSH, LH, Prolactine,TSH, T4L….
1 tube
Sérologie infectieuse (bactérienne, virale et parasitaire)
> 5 sérologies
2 tubes
Si possible prélever en plus, un tube avec gel séparateur SST (sérothèque)
Autoimmunité
Ac anti-nucléaire, anti mitochondrie, anti endomysium…
ANCA, anti CCP, sDNA
1 tube
1 tube
Electrophorèse et protéines spécifiques
Electrophorèse et Immuno-électrophorèse
Protéines spécifiques (Pré Albumine, β2 Microglobuline, …)
1 tube
1 tube
Médicament
Immuno-suppresseur par exemple ou autre médicament
1 tube
Allergie
IgE total, IgE spécifiques, Phadiatop…
Pneumallergènes
Trophallergènes
1 tube
1 tube
1 tube
Autres
Analyse spécialisée
veuillez contacter le laboratoire
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Tube sec
Rouge
•
•
•
Biochimie : Acide urique, Alcoolémie, Amylase, Bilirubine, Cholestérol, Cholestérol
des HDL, Fer sérique, Gamma GT, Glycémie, LDH, Lipase, Magnésium sérique,
Phosphatases alcalines, Phosphatases acides, Albumine, Transaminases,
Triglycérides, Urée …
Protéines spécifiques : Apo A, Apo B, Albumine, Pré-albumine, β2 Microglobuline,
CRP, Haptoglobine, Immunoglobulines, Transferrine, Électrophorèse des protéines et
Immuno-électrophorèse
Auto-immunité : Anticorps antinucléaires, Anticorps antithyroïdiens, anticorps anti
DNA…
Dosage de médicaments : Digoxine, Lithium, Tégrétol, acide valproïque,
Barbitémie…
Facteurs rhumatoïdes : Latex, Waaler-Rose, Facteurs rhumatoïdes
Hormonologie : β-HCG, FSH, LH, Oestradiol, Progestérone, Prolactine, TSH, T3L,
T4L, Testostérone
Marqueurs tumoraux : ACE, α-Foeto-Protéine (AFP), CA 15-3, CA 19-9, CA 125,
PSA, PSA libre, SCC, NSE,Cyfra 21…
Marqueurs cardiaques : Troponine, Myoglobine, CKMb
Allergie : IgE, IgE spécifiques, Phadiatop…
Sérologies virales : HIV, Hépatite A (Ac totaux, IgM), Hépatite B (Ac anti-HBc, Ac
anti-HBs, Ag HBs), Hépatite C (dépistage), Rubéole (IgG), CMV (IgG + IgM), MNI test
Sérologies bactériennes : Syphilis (TPHA, VDRL), Chlamydiae (IgG + IgA),
Brucellose, Mycoplasmes (IgG + IgA), Aslo,Asd…
Sérologies parasitaires : Toxoplasmose (IgG + IgM)
Divers : Vitamine B12, Folates, Ferritine…
•
•
•
•
•
•
Activité anti-Xa
Antithrombine III (AT III)
D - dimères
Fibrinogène
Héparinémie
PDF
•
•
Charge virale
Hémoglobines
glycosylées
BNP
NFS – Plaquettes
VS
Réticulocytes
Groupe sanguin
•
•
•
•
•
•
Coombs direct
Recherche d’agglutinines irrégulières
Ammoniémie
Ciclosporine
Electrophorèse de l’hémoglobine
Recherche parasitaire (paludisme…)
Bicarbonates
Calcium
Ammoniémie
Cortisol
Créatinine
Ionogramme
(potassium)
•
Biochimie : Acide urique, Alcool, Amylase, Bilirubine,
Cholestérol, Cholestérol des HDL, Gamma GT,
Glycémie, LDH, Lipase, Magnésium sérique,
Phosphatases alcalines, Albumine, Transaminases,
Triglycérides, Urée …
•
•
•
•
•
•
•
•
•
•
Citrate de sodium
Bleu
EDTA
Lavande
•
•
•
•
•
Héparinate Lithium
Vert
•
•
•
•
•
•
•
•
•
TP, INR
TCK, TCA,
Facteurs de la coagulation
Remplir impérativement jusqu’au trait
SST
Jaune
Fluorure de sodium
Gris
•
Glycémie isolée
•
Alcoolémie
•
Lactates
•
Sérothèque
•
Calcium ionisé
Remarque : Les examens peuvent être réalisés sur d’autres matrices que celles préconisées dans le
tableau ci-dessus selon les recommandations fournisseurs.
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ORDRE DE PRÉ
VEMENT RECOMMANDÉ
PRÉLÈVEMENT
RECOMMANDÉ
Veuillez également respecter le volume de remplissage des tubes et procéder à une
homogénéisation systématique par 6 à 8 retournements lents pour chaque tube.
Remarque : Ne jamais mélanger 2 tubes citrates mal remplis pour en faire un bien rempli cela
aboutira toujours à une dilution du sang.
Si le prélèvement d’hémostase (bleu) est réalisé avec un système ailettes : purger le vide par un tube
sec.
Une pose de garrot prolongée (plus d’une minute) peut entraîner des modifications
importantes dans les résultats de certaines analyses.
Page 17 sur 35
Flacon Stérile
•
•
•
•
Urines
Crachats, tubages, aspirations bronchiques ...
Liquides de ponctions (LCR, articulaire, ascite …)
Matériel (cathéter…) et tissus
Préconisations pour le prélèvement ECBU :
• Se laver les mains.
• Faire une toilette soigneuse à l’aide de lingettes désinfectantes remises
par le laboratoire ou à l’aide d’un savon antiseptique.
• Eliminer le premier jet dans les toilettes.
• Uriner ensuite dans le flacon stérile fourni par le laboratoire et le refermer
soigneusement.
• Identifier le flacon avec votre nom et prénom si cela n'a pas été fait par le
laboratoire et date et heure du recueil.
Préconisations pour les prélèvements Liquides de ponction :
• Prévoir un tube Hépariné (en plus du flacon)
Le flacon doit être acheminé au laboratoire dans les plus brefs délais. Il peut être
conservé au réfrigérateur (+4°C) maximum 12 heures.
Pour l’ECBU uniquement, l’utilisation de flacon stérile avec tampon
borate permet de conserver les urines à température ambiante
pendant 24h.
Ecouvillons Stériles
•
Prélèvements bactériologiques par écouvillonnage
Préconisations pour les prélèvements ORL: (2 écouvillons)
• Se laver les mains. Prélever avant antibiothérapie :
• au niveau des zones inflammatoires ou nécrotiques
• à la périphérie des fausses membranes, sur les amygdales
• Éviter de toucher la langue, la luette et la paroi postérieure du pharynx
Préconisations pour les prélèvements Pus, Plaie… :
• Prendre les précautions d’asepsie pour éviter de contaminer le
prélèvement par les bactéries se trouvant normalement sur la peau.
• Mettre des gants à usage unique
• Passer les écouvillons sur toute leur surface au niveau de la zone
prélevée (2 écouvillons)
• Noter la prise éventuelle d’antibiotiques.
Préconisations pour les prélèvements uretraux :
• Le patient ne doit pas uriner dans les deux heures précédant le
prélèvement.
• Prélever avec 2 écouvillons fins au niveau du méat. S’il n’y a pas ou peu
er
d’écoulement, recueillir le 1 jet d’urines.
• Pour la recherche de chlamydiae et de mycoplasme : introduire un
écouvillon fin dans l’urètre de 2 à 3 mm en effectuant 3 ou 4 rotations
pour recueillir le maximum de cellules.
• La recherche de chlamydiae (sauf si demande de recherche par PCR)
et de mycoplasme peut se faire sur le premier jet des urines.
Préconisations pour les prélèvements vaginaux ou cervico-vaginaux :
• La patiente devra éviter toute toilette intime, tout traitement local (crème,
gels, savons…) ainsi que tout rapport sexuel dans les 24 heures
précédant l’examen.
• Il est conseillé d'éviter le prélèvement pendant la période menstruelle car
la flore est modifiée (sauf avis contraire du prescripteur).
• Le prélèvement doit être réalisé avant ou à distance de tout traitement
antibiotique (> 15 jours pour les chlamydiae, > 5 jours pour les germes
banaux).
• Après mise en place d’un spéculum à usage unique, prélever 3
écouvillons (col + vagin)
Des écouvillons stériles avec milieux de transport sont préconisés
pour une conservation de 24 à 48h.
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Flacon Stérile
•
•
Coprocultures
Parasitologie, recherche de sang, Clostridium difficile, rotavirus et adénovirus
Préconisations pour le prélèvement (coprologie) :
Cet examen est à effectuer, si possible, lors des épisodes diarrhéiques. Il est
souhaitable de faire cet examen à distance de tout traitement, avec un régime
sans résidu la veille du recueil.
• Recueillir les selles dans le flacon stérile fourni par le laboratoire.
• Identifier le flacon avec votre nom et prénom si cela n'a pas été fait par le
laboratoire. Noter la date et l’heure du recueil.
Le flacon doit être acheminé au laboratoire dans les plus brefs délais.
Préconisation pour le prélèvement (parasitologie) :
Cet examen est à réalisé sur des selles fraîches du jour, une fois émises,
rapporter le flacon dans les plus brefs délais.
Flacon Hémoculture
•
Prélèvements bactériologiques (sang, ascite...)
Préconisations pour hémocultures :
• Noter les renseignements nécessaires sur la fiche de suivi médical: la
date et l’heure du prélèvement, température du patient au moment du
prélèvement ainsi que le traitement éventuel (antibiotique).
• Prendre 1 flacon aérobie et 1 flacon anaérobie
• Réaliser le prélèvement de préférence lors d'un pic fébrile, à l’aide du
dispositif à ailettes ou à défaut, à la seringue après une désinfection
soignée du site et des bouchons de chaque flacon et ce, à l’alcool iodé ou
à la Bétadine :
Technique classique au dispositif à ailettes : Prélever la veine avec
l’aiguille à ailettes. Remplir le flacon aérobie en premier, puis le flacon
anaérobie. (Environ 10ml par flacon)
Prélèvement à la seringue : si veine difficile : Prélever de façon
aseptique 20ml de sang. Introduire stérilement 10ml de sang à travers le
centre du bouchon en caoutchouc de chacun des flacons, en respectant
l’ordre suivant : N°1 : Aérobie, N° 2 : Anaérobie.
• A la fin du prélèvement, pendant le temps de contention, désinfecter à
nouveau les flacons.
• Homogénéiser les flacons par 2 ou 3 retournements.
• Conserver à 37°C.
Les flacons doivent être acheminés au laboratoire dans les plus brefs délais.
Urines
•
Urines 24h, Compte d’addis
Urines de 24 heures
• Au réveil, uriner dans les toilettes et noter l’heure qui sera le départ du
recueil.
• Puis pendant 24 heures, recueillir la totalité des urines dans le flacon
jusqu’à l’heure indiquée au départ
• Rapporter la totalité des urines au laboratoire.
Compte d'Addis
• 3 heures avant le lever habituel, le patient doit vider sa vessie dans les
toilettes.
• Boire un verre d'eau, se recoucher et rester allongé au repos pendant 3
heures.
• Après ces trois heures, uriner complètement dans le bocal, et rapporter
les urines au laboratoire.
Il est nécessaire de disposer de la totalité des urines (veiller à fermer hermétiquement
les flacons de recueil).
Identifier le(s) flacon(s) avec votre nom et prénom si cela n'a pas été fait par le
laboratoire.
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LISTE DES ANALYSES
ANALYSES
ECHANTILLON
SITE
DELAIS
A Ac anti-CCP
C
J0 à J+4
Ac anti-DNA
M
J0 à J+4
Ac anti-endomysium
M
J0 à J+4
Ac anti-mitochondries
M
J0 à J+4
Ac anti-muscles lisses
M
J0 à J+4
Ac anti-nucléaires
M
J0 à J+4
Ac anti-nucléaires
solubles
M
J0 à J+4
Ac anti-thyroglobuline
N
J0 à J+1
Ac antithyropéroxydase
N
J0 à J+1
ACE
N
J0 à J+1
Acide folique (Vitamine
B9)
N
J0 à J+1
12 h strictement à jeun
N et S
J0 à J+1
A jeun de préférence
Acide valproïque
S
J0 à J+1
Prélever juste avant prise du
médicament. Posologie, date et
heure de la dernière prise
Activité anti-Xa (AXA)
S
J0 à J+1
Remplir le tube jusqu’au trait
Préciser l’heure de l’injection
Prélever à 3-4h après injection
S
J0 à J+1
Préciser date injection anti-D
nom de jeune fille obligatoire. Si
positif, identification réalisée en
sous-traitance avec l'EFS
N et S
J0 à J+1
N et S
J0 à J+1
S
J0 à J+1
Pas de désinfection à l’alcool
Allergènes
C
J0 à J+4
Alpha FP
N
J0 à J+1
Acide urique
ou
Agglutinines
irrégulières (RAI)
ALAT transaminase
ou
Albumine sérique
Alcool
ou
CONDITIONS
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Ammoniaque
S
J0 à J+1
Transport dans la glace
N et S
J0 à J+1
La lipase se substitue à cet examen.
L'amylase est traitée en cas de
demande explicite et motivée par le
prescripteur.
ANCA
C
J0 à J+4
Anticoagulant circulant
S
J0 à J+1
Antistreptodornase
C
J0 à J+4
Antistreptolysine O
C
J0 à J+4
Antithrombine III (AT3)
S
J0 à J+1
APO A1
N
J0 à J+1
Jeun strict
APO B
N
J0 à J+1
Jeun strict
N et S
J0 à J+1
S
J0 à J+1
N et S
J0 à J+1
N et S
J0 à J+1
N et S
J0 à J+1
N et S
J0 à J+1
C Ca 125
N
J0 à J+1
Ca 153
N
J0 à J+1
Ca 19-9
N
J0 à J+1
N et S
J0 à J+1
S
J0 à J+1
S
J0 à J+7
Fait le vendredi
N et S
J0 à J+1
Amylase
ASAT transaminase
ou
ou
ou
B Beta 2 microglobuline
Beta HCG
Bicarbonates
Bilirubine totale et
conjuguée
ou
ou
ou
BNP (pas de tube en
verre)
Calcium
Carbamazépine
(Tégretol)
ou
ou
CDT
Chlore
ou
Mentionner la date de dernières
règles. Ce dosage est sous-traité
chez l'homme
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Cholestérol HDL
N et S
J0 à J+1
Jeun strict
N et S
J0 à J+1
Jeun strict
S
J0 à J+1
CLA 30 Mixte
C
J0 à J+4
CLA trophallergènes
C
J0 à J+4
CLA pneumallergènes
C
J0 à J+4
CMV IgG / IgM
N
J0 à J+1
Coombs direct
S
J0 à J+1
Cholestérol total
CK-MB
Cortisol
CPK
Créatinine
CRP
ou
ou
ou
ou
ou
ou
ou
Date de début de grossesse
S
J0 à J+1
Respecter les heures mentionnées
sur la prescription
(Par défaut 8h00 et 16h00)
N et S
J0 à J+1
Cet examen n'est pas cumulable
avec la Troponine
N et S
J0 à J+1
Penser à noter le poids du patient si
clairance de Cockcroft demandée
N et S
J0 à J+1
J+7
Prélever au laboratoire. Le tube et
l'aiguille doivent être maintenus à
37°C avant le prélèvement.
S
J0 à J+1
Dépakine
S
J0 à J+1
Digoxine
S
J0 à J+1
S
J0 à J+7
Préciser l’origine ethnique
Electrophorèse des
protéines
S
J0 à J+3
Si un pic monoclonal est dépisté, le
typage est réalisé
Epstein-Baar virus
(EBV)
M
J0 à J+3
Estradiol
N
J0 à J+1
N
J0 à J+1
Cryoglobuline
D D-dimères
Electrophorèse de
E
l'hémoglobine
F Facteurs rhumatoîdes
D.D.R.
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Fer / Capacité /
Ferritine
N
J0 à J+1
Fer
N
J0 à J+1
Ferritine
N
J0 à J+1
Fibrine
S
J0 à J+1
FSH
N
J0 à J+1
D.D.R.
N et S
J0 à J+1
N et S
J0 à J+1
Jeun strict
et
1h30 après le repas (SFBC)
N et S
J0 à J+1
Respecter les heures pour les
cycles glycémiques
Les nom, prénoms, date de
naissance, nom de jeune fille, sont
obligatoires sur le tube de
prélèvement.
G GGT
Glycémie à jeun / post
prondiale
Glycémie après charge
et hyperglycémie
provoquée
ou
ou
ou
plasma fluoré impératif pour les
prélèvements effectués à
l’exterieur
Groupe sanguin
S
J0 à J+1
H Hélicobacter pylori
C
J0 à J+2
Hémoglobine
glycosylée (HbA1c)
S
J0 à J+1
Héparine
S
J0 à J+1
Hépatite A totaux
N
J0 à J+1
Contexte clinique
Préciser si le patient est vacciné
Hépatite A IgM
N
J0 à J+1
Contexte clinique
Hépatite B core
N
J0 à J+1
Contexte clinique
Hépatite B core M
N
J0 à J+1
Contexte clinique
Hépatite B antigène
HBS
N
J0 à J+1
Contexte clinique
Hépatite B anticorps
HBS
N
J0 à J+1
Hépatite C
N
J0 à J+1
Contexte clinique
En cas de positivité, une
confirmation sur un autre
prélèvement par une autre
technique est nécessaire, suivi
éventuellement d'une recherche
d'ARN viral.
HIV-1/HIV-2
N
J0 à J+1
N
J0 à J+1
I Ig A
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Ig G
N
J0 à J+1
Ig M
N
J0 à J+1
Ig E et Ig E spécifiques
C
J0 à J+4
N et S
J0 à J+1
S
J0 à J+3
C
J0 à J+1
N et S
J0 à J+1
N
J0 à J+1
N et S
J0 à J+1
Ionogramme
ou à défaut
Immuno-électrophorèse
L Latex Waaler Rose
LDH
LH
Lipase
ou
D.D.R.
Préciser, forme, date et heure de la
dernière prise. Si forme standard,
prélever juste avant prise du
médicament. Si forme LP, 12 h
après la prise.
Lithium
S
J0 à J+1
Lyme
L
J0 à J+3
N et S
J0 à J+1
C et S
J0 à J+1
S
J0 à J+1
Numération formule
N
sanguine
S
J0 à J+1
Si présence d’agrégats
plaquettaires chez un patient connu,
prélever en plus un tube citraté
P Paludisme
S
J0 à J+1
Mentionner le contexte clinique
(voyage en pays d’endémie,
prophylaxie). La goutte épaisse est
à réaliser au laboratoire
PDF
S
J0 à J+1
Phadiatop
C
J0 à J+4
N et S
J0 à J+1
N et S
J0 à J+1
S
J0 à J+1
Si présence d’agrégats
plaquettaires chez un patient connu,
prélever en plus un tube citraté.
M Magnésium
ou
MNI test
Myoglobine
Phosphatases alcalines
Phosphore
Plaquettes
ou
ou
ou
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Potassium
N et S
J0 à J+1
Préalbumine
N
J0 à J+1
Progestérone
N
J0 à J+1
De préférence avant 10 heures.
Mentionner la date des dernières
règles.
Prolactine
N
J0 à J+1
Mentionner la date de dernières
règles.
N et S
J0 à J+1
Prélever après 15 min de repos, de
préférence avant 9h à jeun.
PSA Libre et Totale
N
J0 à J+1
Absence de toucher rectal depuis
48 h.
PTH
N
J0 à J+2
N et S
J0 à J+1
Réticulocytes
S
J0 à J+1
Rubéole IgG
N
J0 à J+1
Sérologie Chlamydiae
Trachomatis
L
J0 à J+3
Sérologie Chlamydiae
Pneumoniae
L
J0 à J+3
Sérologie Mycoplasmes
(uréalyticum et hominis)
L
J0 à J+3
N et S
J0 à J+1
L
J0 à J+1
T T3 libre
N
J0 à J+1
T4 libre
N
J0 à J+1
Taux de prothrombine
(TP INR)
S
J0 à J+1
Préciser le contexte clinique
(examen pré-opératoire / traitement:
nom de spécialité et posologie)
Temps de céphaline
activé (TCK)
S
J0 à J+1
Préciser le contexte clinique
(examen pré-opératoire / traitement:
nom de spécialité et posologie)
Testostérone
N
J0 à J+1
N et S
J0 à J+1
S
J0 à J+1
ou à défaut
Protéines totales
R Réserves alcalines
S
Sodium
ou
Syphilis (BW)
Test o'sullivan
ou
ou
L’hémolyse fausse le dosage.
Ajouter systématiquement le Code
NF
En cas de dépistage positif, le
titrage est réalisé
plasma fluoré impératif pour les
prélèvements exterieurs
Test synactene
ou
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Toxoplasmose IgG /
IgM
N
J0 à J+1
Transferrine
N
J0 à J+1
T
J0 à J+1
C
J0 à J+4
N et S
J0 à J+1
N
J0 à J+1
Avant nouvelle prise du traitement
substitutif
N et S
J0 à J+1
N
J0 à J+1
Vitamine D (25 OH D3)
N
J0 à J+1
Vitesse de
sédimentation
S
J0 à J+1
C
J0 à J+1
Triglycérides
ou
Trophatop
Troponine
ou
TSH
U Urée
V Vitamine B12
W Waaler Rose (Latex)
ou
Date de début de grossesse
Jeun strict
C : site de Chantilly L : site de Lamorlaye M : site de Montataire N : site de Nogent S : site de Senlis
Urines (Echantillons et 24h) délais J0 à J+1
Acide urique Albumine
Amylase
Calcium
Chlore
Créatinine Glucose
Magnésium µAlbumine Potassium Phosphore
Sodium Urée
B2 µglobuline
Cannabis
Opiacés
Cocaïnes
Amphétamines
RQ : Pour les recherches de stupéfiant, les urines doivent être émises obligatoirement au laboratoire,
2 flacons seront demandés et une pièce d’identité devra être présentée au secrétariat.
Bactériologie :
• Etude cytobactériologique : Rendu à J+2 – Sinon à J+3
• Antibiogramme (selon le germe) : Rendu à J+1 – Sinon à J+2 (Anaérobie…)
• Culture et ATB de Mycoplasme uro-génitaux: Rendu à J+2 – Sinon à J+4 (Si positif)
Parasitologie Mycologie:
• Recherche de parasites dans les selles : Rendu à J0 – Sinon à J+1
• Recherche de mycose (dermatophytes…) : Rendu à 1 mois
Rappel : Lorsqu’une analyse est transmise, se reporter au guide du laboratoire spécialisé
pour prendre connaissance des conditions de prélèvement, choix des tubes et conditions de
conservation des échantillons. Si guide non disponible, veuillez contacter le laboratoire.
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ANALYSES COMPLEMENTAIRES
Temps de saignement
Méthode de DUKE
• Désinfection de la peau avec un antiseptique non alcoolique.
• Attendre une à deux minutes.
• Incision franche horizontale de la partie médiane du lobe de l'oreille avec une aiguille ou un
vaccinostyle. Déclenchement du chronomètre.
• Recueil des gouttes de sang toutes les 30 secondes sur le coton placé en dessous du lobe
de l'oreille (absorption du sang par contact et non séchage par le coton appuyé sur l'incision).
• Noter le temps écoulé depuis l’incision jusqu’à l’arrêt du saignement sur la fiche de suivi
médical.
Méthode d’IVY sensibilisée :
• Placer le bras du patient sur un accoudoir, en exposant la face antérieure de l'avant bras.
• Installer le brassard du tensiomètre sur le milieu du bras et appliquer une pression
permanente de 40 mm Hg.
• Désinfecter avec un antiseptique non alcoolique.
• Avec un dispositif à incision entièrement automatisée (Surgicutt enfant ou adulte) faire une
incision sur la face antérieure de l’avant bras en évitant les veinules superficielles.
• Déclencher le chronomètre.
• Après une période de 30 secondes, éponger avec du papier filtre en tamponnant légèrement
pour ne pas gêner la formation du clou plaquettaire.
• Éponger le sang toutes les 30 secondes jusqu'à ce que le sang ne tache plus le papier filtre.
Arrêter le chronomètre, le temps de saignement est déterminé par le temps arrondi à 30
secondes.
• Noter le temps écoulé depuis l’incision jusqu’à l’arrêt du saignement sur la fiche de suivi
médical.
Tests de tolérance au glucose
Le patient doit être à jeun pour le premier prélèvement.
Glycémie à jeun et post-prandiale
• Réaliser le prélèvement lorsque le patient est à jeun.
• Puis réaliser un deuxième prélèvement 1h30 à 2 heures après le début d’un déjeuner ou un
petit déjeuner riche en sucre.
Test de O’ Sullivan
• Réaliser le prélèvement lorsque le patient est à jeun.
• Le patient ingère 50g de glucose.
Réaliser à nouveau un prélèvement après 60 minutes, le patient étant resté au repos dans
l’intervalle de temps.
Hyperglycémie provoquée
• Réaliser le prélèvement lorsque le patient est à jeun. (T0)
• Le patient ingère la quantité de glucose prescrite par le médecin. En absence de prescription
donner au patient : - femme enceinte 75 g de glucose
- Sinon en fonction du poids (environ 1g au Kg)
• Réaliser à nouveau un prélèvement selon la prescription ou les modalités du laboratoire :
- femme enceinte T60 T120
- Sinon T30 T60 T90 T120 voir T180 (selon la prescription)
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Dosage de cortisol et test au synacthène
Dosage de cortisol
Sans précision sur la prescription, un prélèvement sur tube héparine lithium (bouchon vert) ou sur
tube sec (bouchon rouge) est réalisé entre 7h et 10h et si demandé, vers 16h.
Test au synacthène
Il ne peut être réalisé que par un médecin biologiste ou un infirmier.
• Réaliser entre 7h et 8h un prélèvement sur tube héparine lithium ou sur tube sec pour un
cortisol de base (on peut éventuellement doser 17 OH Progestérone).
• Injecter l’ampoule de synacthène prescrite par le médecin et apportée par le patient :
Synacthène immédiat : Réaliser à nouveau un prélèvement sur un tube héparine- lithium ou sur
tube sec après 30 et 60 minutes, le patient étant resté au repos dans l’intervalle de temps.
Cryoglobuline
Le prélèvement doit se faire au laboratoire. (matériels et tubes stockés à 37°c).
Examens cytobactériologique des urines (ECBU) Cas particuliers
Le sac collecteur pour les enfants :
• Faire une toilette soigneuse grâce à la lingette imprégnée de solution antiseptique.
• Retirer le revêtement qui protège la zone adhésive.
• Appliquer en massant pour garantir une bonne adhérence.
Pour les garçons, relever le pénis et l’incérer dans la poche. Pour les filles, appliquer la poche
autour de l’orifice urinaire.
• Ne pas dépasser 1h de pose du sac collecteur.
• Pour enlever la poche soulever un coin et détacher doucement. Pour assurer l'étanchéité
coller l'adhésif face contre face, renforcer éventuellement avec un sparadrap.
Le sondage à demeure (SAD) :
Précaution de base : Respectez impérativement le système clos.
Les sondes présentent un site de prélèvement sous forme d'une pastille.
• Clamper sous le site de prélèvement.
• Attendre.
• Récupérer l'urine fraîchement émise à la seringue après désinfection du site de prélèvement,
dans le flacon stérile.
Le sondage pour ECBU chez les patients incontinents :
• Respecter les règles d'asepsie (gants et compresses stériles, champ…).
• Utiliser une sonde courte à extrémité arrondie.
• Recueillir l’urine en milieu de jet.
• Enlever la sonde.
Les sondages ne sont en aucun cas réalisés au laboratoire
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Prélèvement vaginal ou cervico-vaginal
• La patiente devra éviter toute toilette intime, tout traitement local (crème, gels, savons…) ainsi
que tout rapport sexuel dans les 24 heures précédant l’examen.
• Il est conseillé d'éviter le prélèvement pendant la période menstruelle car la flore est modifiée
(sauf avis contraire du prescripteur).
• Le prélèvement doit être réalisé avant ou à distance de tout traitement antibiotique (> 15 jours
pour les chlamydiae, > 5 jours pour les germes banals).
En préambule au prélèvement, le biologiste préleveur doit s’assurer des conditions
physiologiques du sujet.
• Après mise en place d’un spéculum à usage unique, prélever en fonction du tableau suivant :
Germes
Gonocoque
banals
Site de
prélèvement
Nombre
d’écouvillons
Mycoplasme
Chlamydiae
Herpes
Vaginal
Col
Endocol
Endocol
Vulvo vaginal
1
1
1
1
1
• Un écouvillon supplémentaire est prélevé pour l’étalement de lames et coloration.
Prélèvement urétral
• Le patient ne doit pas uriner dans les deux heures précédant le prélèvement.
• Prélever 2 à 3 écouvillons au niveau du méat (un pour état frais, un pour la mise en culture,
un pour l’étalement de lames).
• S’il n’y a pas ou peu d’écoulement, recueillir le 1er jet d’urines.
• Pour la recherche de chlamydiae et de mycoplasme : introduire un écouvillon fin dans l’urètre
de 2 à 3 mm en effectuant 3 ou 4 rotations pour recueillir le maximum de cellules.
Scotch test
Préconisations pour le prélèvement :
A effectuer au lever avant la toilette et les premières selles.
• Décoller le scotch de son support.
• Appliquer le coté adhésif sur les plis de la marge anale et le maintenir en appuyant quelques
secondes.
• Retirer le scotch et l’étaler sur la lame support.
• Renouveler l’opération avec le second scotch.
• Replacer les 2 lames dans l’étui.
• Identifier l'étui avec votre nom et prénom si cela n'a pas été fait par le laboratoire.
L'étui doit être acheminé au laboratoire dans les plus brefs délais.
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Autres prélèvements bactériologiques
Nature du
prélèvement
Mode de prélèvement
•
•
Sperme
•
(spermoculture et
spermocytogramme) •
Après 3 à 7 jours d’abstinence
Se laver les mains
Uriner
Par masturbation, après une désinfection
locale.
Recueil de la totalité de l’éjaculât
Flacon
stérile
gradué
apporté au laboratoire
dans un délai d’une demiheure. De préférence à
réaliser au laboratoire.
Prendre les précautions d’asepsie pour
éviter de contaminer le prélèvement par
les bactéries se trouvant normalement
sur la peau.
Mettre des gants à usage unique
Passer les écouvillons sur toute leur
surface au niveau de la zone prélevée
Noter la prise éventuelle d’antibiotiques.
• Si
abcès
fermé :
prélèvement à la seringue
• Si
abcès
ouvert :
Minimum : 2 écouvillons
Prélever avant antibiothérapie :
• au niveau des zones inflammatoires ou
nécrotiques
• à la périphérie des fausses membranes,
sur les amygdales
• Éviter de toucher la langue, la luette et la
paroi postérieure du pharynx
2 écouvillons stériles à
acheminer dans les 2
heures au laboratoire à
température ambiante
•
•
Plaie, escarre,
larmes, pus profond
etc.
•
•
•
•
•
•
•
ORL
Gorge :
amygdales
conduit
Oreille :
auditif externe
Nez
Pharynx
Recommandations
Faire le prélèvement avant le lever pour le Flacon stérile, acheminé
Crachat, tubage et/ou
crachat et dans l’heure qui suit le lever pour le plus rapidement au
aspiration bronchique
le tubage
laboratoire
Oculaire
Appliquer les écouvillons au niveau de la
conjonctivite inférieure en partant de l'angle
externe vers l'angle interne de l’œil.
Pour les lentilles de contact, déposer celle-ci
dans un flacon stérile et penser à récupérer
le boîtier.
•
Recherche de
dermatophytes :
Ongles, cheveux,
squames
•
•
•
2 écouvillons stériles sont
nécessaires pour effectuer
l'examen ou flacon stérile
(lentilles) à acheminer
dans les 2 heures au
laboratoire à température
ambiante
Prélever de préférence à la périphérie
des lésions des squames à l’aide d’un
vaccinostyle ou d’une curette
En cas de teigne, épiler les cheveux
susceptibles d’être atteints
De préférence à réaliser
Pour les ongles, couper avec la pince à au laboratoire
ongle toute la partie de l’ongle atteinte,
gratter à la limite de la zone saine avec
un vaccinostyle ou d’une curette
En cas de lésion suintante, écouvillonner
le pus et gratter le plancher de la lésion
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TRANSPORT ET CONSERVATION DES ÉCHANTILLONS
Les conditions de transport sont essentielles à la qualité des résultats.
Les échantillons sanguins nécessitent d’être conservés à une température stable, en évitant le plus
possible les chocs thermiques et les vibrations. Il est donc nécessaire de les mettre à l’abri de la
chaleur ou du froid en utilisant des sacs de transport isothermes.
Dans certains cas, le prélèvement doit impérativement être réalisé au laboratoire.
Exigences légales concernant le transport des échantillons de diagnostics : ADR : Accord
européen relatif au transport international des marchandises dangereuses par route.
Le transport des échantillons, réalisé par les coursiers des laboratoires, est organisé et effectué de
manière à respecter les obligations légales et les exigences de délai et de température nécessitées
par les analyses :
- L’ensemble des échantillons est triple-emballé et identifié comme Matière biologique de catégorie B
(UN3373).
- Les tournées dans les cabinets médicaux et entre les laboratoires permettent d’assurer un délai
entre le prélèvement et l’analyse conforme aux besoins des techniques.
Recommandations:
- Sauf mention particulière figurant dans la table des analyses, les prélèvements doivent être
transmis au laboratoire aux environs de 20°C (entre 10 et 25°C).
Merci de prendre toutes les précautions utiles à la bonne conservation des échantillons (ne pas
déposer les boites près d’une source de chauffage ou de climatisation du véhicule).
- Position des tubes: verticale (bouchon vers le haut)
Dans la mesure du possible utiliser des petites glacières de transport. Il sera parfois nécessaire
d’ajouter une plaque eutectique afin de maintenir la température de transport en dessous de 25°C.
- Après le prélèvement, merci de déposer les prélèvements le plus rapidement possible au
laboratoire.
Attention au stockage des tubes mêmes vides: les tubes de prélèvement sous vides ne sont pas en
verre mais en PVC et se déforment sous l’effet de la chaleur. De plus les propriétés des
anticoagulants contenus à l’intérieur sont altérées. Ne pas stocker les tubes vides dans les
véhicules en été.
S’il est nécessaire de faire une analyse complémentaire ou un redosage, vous devez appeler le
laboratoire pour voir s’il est possible de réaliser l’analyse sur un échantillon conservé, ou si un
nouveau prélèvement doit être réalisé.
Conservation pré-analytique :
Lorsque l’échantillon n’est pas traité le jour même (cas des séries à jour fixe ou de prélèvements
après les derniers passages de coursiers), les échantillons sont conservés.
Conservation post-analytique :
Au laboratoire, les échantillons analysés sont conservés pour une durée déterminée permettant,
selon les paramètres et délais de conservation, un recontrôle de l’identité, un contrôle de résultat ou
la réalisation d’une analyse complémentaire.
En dehors du cas particuliers des échantillons destinés à la sérothèque, les échantillons sont
conservés sur le site réalisateur pendant 6 jours.
Selon l’analyte concerné, un contrôle, un rajout est possible selon l’état de l’échantillon (tube
centrifugé, aliquot, échantillon congelé) dans le respect des conditions de stabilité et de conservation
définis.
Les échantillons sont ensuite éliminés selon la Procédure « Traitement et élimination des déchets »
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ÉLIMINATION DES DÉ
DÉCHETS
Le tri, le stockage et l’élimination des déchets d’activités de soins à risques infectieux est soumis à la
réglementation. Dès la production des DASRI, un tri doit être effectué de manière à assurer la
sécurité des personnes qui vont manipuler les contenants de DASRI. Ils ne doivent pas être
mélangés aux ordures ménagères et doivent être recueillis dans les contenants prévus à cet usage
(de différents types).
Les fûts, les minis collecteurs ou les boites permettent le recueil des DASRI piquants, coupants,
tranchants.
Les cartons permettent le recueil des DASRI mous (coton, pansements…) ou déjà recueillis dans un
container en plastique hermétiquement fermé (ex : un mini collecteur plein et fermé pourra être
éliminés dans un carton).
RESPECTER LES LIMITES DE REMPLISSAGE DES DIFFERENTS CONTAINERS.
NE PAS RE-CAPUCHONNER LES AIGUILLES
A DOMICILE AUCUN DECHET POTENTIELLEMENT CONTAMINE N’EST LAISSE CHEZ LE
PATIENT
Le stockage et l’enlèvement sont également réglementés. L’élimination des déchets doit se faire via
un organisme spécialisé.
TRANSMISSION DES RÉ
RÉSULTATS
Conformément à la législation, seul le compte-rendu sur papier à en tête du laboratoire fait foi.
Le médecin et le patient sont les destinataires « réglementaires ».
Des règles sont établies afin de préserver la confidentialité des informations transmises. Dans
certains cas (dossiers incomplets, urgence médicale, confort), il est possible que les résultats
communiqués ne soient pas passés par le processus d’édition finale (mention de la personne
autorisant la diffusion du compte rendu).
La transmission des résultats d’analyses à destination des patients mineurs, à destination de la
Médecine de Santé au Travail, et des compagnies d’assurances est soumise à une réglementation
précise, respectée par les laboratoires.
Transmission des résultats au patient
Les comptes-rendus d’analyses peuvent :
- lui être remis personnellement ou à un tiers sous pli cacheté au laboratoire (le patient prend la
responsabilité de mandater une tierce personne)
- lui être envoyés par courrier postal
- lui être transmis via un correspondant du laboratoire (pharmacies) sous pli cacheté
Les résultats d’analyses : - peuvent être communiqués par téléphone selon des règles définis par le
laboratoire (suivi thérapeutique…) et en respectant la confidentialité.
- la transmission par fax est possible après accord écrit de l’interlocuteur
Transmission des résultats au prescripteur
Les comptes-rendus d’analyses lui sont systématiquement transmis (sauf demande contraire) par
courrier postal ou par service « coursiers »
Les résultats d’analyses peuvent leur être également faxés ou communiqués par téléphone ou
transmis par voie électronique cryptée à la demande du patient, à la demande du prescripteur ou à
l’initiative du biologiste (Apicrypt, serveur de résultats).
A ce jour, en aucun cas, ces outils ne se substituent au compte rendu émis au format papier à en
tête des laboratoires de la société BCD Biologie et portant l’identification de la personne
autorisant la diffusion du compte rendu.
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ANNEXES
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Formulaire
Enregistrement des demandes formulées
oralement et des demandes hors nomenclaturese
Date de mise en application : 01/02/2011
Demande d’analyses supplémentaires par rapport à une ordonnance existante
Demande d’analyses sans ordonnance
Accord pour la réalisation d'analyses hors nomenclature
Refus d’analyses prescrites (à préciser) :
Le prescripteur en sera informé sur le compte-rendu
Nom :
Prénom :
Date de naissance :
Sexe :
H
F
Analyses demandées :
Coller ici une étiquette du dossier
Médecin traitant à contacter en cas de résultats perturbés : ……………………...………………..
En signant ce document, je reconnais avoir été informé :
• Des conditions de prélèvement
• Du lieu de réalisation de ces analyses
• Du délai et des modalités de rendu des résultats
• Du montant à payer
• Du fait que ce montant ne pourra pas être pris en charge par la sécurité sociale
Je m'engage à en régler le montant au laboratoire ……………………………… ou au laboratoire qui les
aura réalisées.
Fait à …………………………….
Le ………………………
Signature
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K2 - ENR 01 Version 01
Formulaire
Bon de commande
Date de mise en application : 01/04/2006
Commande passée par : . . . . . . . . . . . . . . . .
Date : . . . . . . . . . . . . . . . .
Date de livraison souhaitée : . . . . . . . . . . . .
Commande urgente
‫‫‬
Matériel à déposer (cabinet, pharmacie…)
……………………………………….…………….
Liste du matériel fourni par le laboratoire
Désignation
Conditionnement
Quantité
TUBES
Tube vacutainer sec 4ml Rouge
100
100
100
Tube vacutainer iono 4ml Vert
100
Tube vacutainer coag 4,5ml Bleu
100
Tube vacutainer coag 1,8 ou 2,5ml Bleu
50
Tube vacutainer NF 5ml Mauve
100
Tube vacutainer Glycémie 4ml Gris
100
Tube vacutainer SST 3,5ml Jaune
100
AIGUILLES
Aiguilles ordinaire 25 x 0,8
1 boite de 100
Aiguilles ordinaire 25 x 0,9
1 boite de 100
Aiguille vacutainer 25 x 0,7
1 boite de 100
1 boite de 100
1 boite de 100
1 boite de 100
1 boite de 100
DIVERS
Flacons ECBU
unité
Flacons urines des 24h
unité
Flacons urines HLM
unité
Flacons pour coproculture
unité
Flacons pour hémocultures (Aéro/Anaéro)
Par paire
Ecouvillons ordinaires
unité
Ecouvillons (porthagerm)
unité
Corps de pompe
unité
Unité de prélèvement à ailettes
unité
Sachets de transport
unité
Préparée ou contrôlée par :
Le :
Visa
K2-ENR01-01 Bon de commande matériel
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C2 ENR04 02 Manuel de prélèvement révision 21.11.2014

Transcription

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