Références de commande cobas c pack(s) utilisable(s)

0004490754190c501V10.0
BARB
Barbiturates Plus
Références de commande
04490754 190
03304671 190
03304698 190
04590856 190
ONLINE DAT Barbiturates Plus 200 tests
Calibrateurs Preciset DAT Plus I CAL 1 à 6 (6 x 5 mL)
C.f.a.s. DAT Qualitative Plus (6 x 5 mL)
C.f.a.s. DAT Qualitative Plus Clinical (3 x 5 mL)
Control Set DAT I PreciPos DAT Set I (2 x 10 mL)
03312950 190
Control Set DAT I PreciNeg DAT Set I (2 x 10 mL)
Control Set DAT Clinical PreciPos DAT Clinical (2 x 10 mL)
04500873 190
Control Set DAT Clinical PreciNeg DAT Clinical (2 x 10 mL)
Français
Informations techniques
Pour les analyseurs cobas c 311/501:
BA2QP: ACN 572: pour les déterminations qualitatives
BA2SP: ACN 573: pour les déterminations semi-quantitatives
BA2QC: ACN 788: pour la détermination qualitative avec C.f.a.s. DAT
Qualitative Plus Clinical
Pour l'analyseur cobas c 502:
BA2QP: ACN 8572: pour les déterminations qualitatives
BA2SP: ACN 8573: pour les déterminations semi-quantitatives
BA2QC: ACN 8788: pour la détermination qualitative avec C.f.a.s. DAT
Qualitative Plus Clinical
Domaine d'utilisation
Barbiturates Plus (BARB) est un test pour la détermination qualitative et
semi‑quantitative in vitro des barbituriques dans l'urine humaine sur les
systèmes Roche/Hitachi cobas c à un seuil de 200 ng/mL. Des résultats
semi-quantitatifs peuvent être obtenus, ce qui permet aux laboratoires
d’évaluer les performances du test dans le cadre d’un programme de
contrôle de qualité. Les tests semi‑quantitatifs sont prévus pour déterminer
une dilution appropriée de l'échantillon en vue d'une vérification par une
méthode de confirmation comme la chromatographie en phase
gazeuse‑spectrométrie de masse (GC/MS).
Le test Barbiturates Plus ne fournit qu’un résultat préliminaire. Les
résultats doivent être confirmés par une méthode plus spécifique.
Utiliser de préférence la GC/MS comme méthode de confirmation.1
Tous les tests de dépistage pour abus de drogue, et surtout si le test
initial est positif, doivent être interprétés en tenant compte du tableau
clinique et de l’avis d’un professionnel.
Caractéristiques
Les barbituriques, famille de médicaments dérivés de l’acide barbiturique
(malonylurée), sont des hypnotiques sédatifs dépresseurs du système
nerveux central (SNC).1,2,3,4,5,6 Ils sont classés en fonction de leur durée
d’action (action très brève, brève, intermédiaire et prolongée). Les
barbituriques sont utilisés en médecine comme sédatifs pour réduire la
tension émotionnelle et induire le sommeil; par ailleurs, dans certaines
formes d'épilepsie, ils réduisent la fréquence des convulsions en élevant le
seuil convulsif. A doses excessives, ils peuvent entraîner des troubles de la
coordination (troubles de l’élocution, perte de l’équilibre), une altération des
perceptions (erreurs de jugement, perception exagérée des performances)
et une euphorie par désinhibition. Les surdoses peuvent provoquer la
stupeur, le coma et la mort. L’absorption simultanée de barbituriques et
d’alcool, d’opiacés et d’autres dépresseurs du système nerveux central
peut déclencher une dépression respiratoire qui peut être fatale. Bien que
l'utilisation de leur pouvoir sédatif et hypnotique ait été largement
remplacée par les benzodiazépines, les barbituriques conservent une place
importante comme anesthésiques ou anticonvulsivants.
L’administration des barbituriques se fait habituellement par voie orale,
mais ils peuvent également être injectés par voie intraveineuse ou
intramusculaire. Après ingestion, ils sont facilement absorbés dans
l’estomac et pénètrent rapidement dans le sang. La distribution et la
concentration des barbituriques dans les différents tissus dépend beaucoup
de leurs propriétés de fixation aux protéines et de liposolubilité. Les
concentrations les plus hautes sont atteintes dans les dépôts adipeux et les
tissus riches en protéines. La plupart des barbituriques sont métabolisés
dans le foie par oxydation et conjugaison, désalkylation/hydroxylation de
2016-05, V 10.0 Français
System‑ID 07 6917 7
Codes 431‑436
cobas c pack(s) utilisable(s) sur les analyseurs
suivants
Roche/Hitachi cobas c 311, cobas c 501/502
Code 699
l’azote et/ou désulfuration des thiobarbituriques. Le taux de métabolisation
hépatique dépend du médicament: le sécobarbital est largement oxydé en
une série de métabolites pharmacologiquement inactifs, alors que le
phénobarbital et le barbital sont essentiellement excrétés dans l’urine sous
forme inchangée. Les barbituriques sont excrétés sous forme de mélanges
principe actif/métabolites dont les proportions et les concentrations varient
en fonction du médicament.
Principe
Le test repose sur l'interaction cinétique de microparticules en solution
(KIMS)7,8 dont on mesure les variations du signal lumineux. Si la molécule
n’est pas présente dans l’échantillon, les anticorps libres se fixent sur les
conjugués microparticule‑molécule, donnant lieu ainsi à la formation d’amas
de particules. Comme la réaction d’agrégation a lieu lorsque la molécule
recherchée n’est pas présente, la variation de la densité optique
(absorbance) augmente.
Si l’échantillon d’urine analysé contient la molécule recherchée, la molécule
entre en compétition avec le dérivé de la molécule lié à la microparticule
pour les anticorps libres. Les anticorps étant liés à la molécule de
l’échantillon ne peuvent plus favoriser la formation d’amas de particules, ce
qui empêche la formation d’un réseau de particules. Lorsque la molécule
recherchée est présente, l’augmentation de l'absorbance diminue
proportionnellement à la concentration de la molécule dans l’échantillon. La
concentration de la molécule dans l’échantillon est déterminée en fonction
de la valeur obtenue pour une concentration seuil connue d'analyte.
Réactifs - composition et concentrations
R1
Tampon, azide de sodium (0.09 %)
R2
Anticorps (polyclonal de mouton) anti‑sécobarbital, tampon,
sérumalbumine bovine, azide de sodium (0.09 %)
R3
Dérivé de sécobarbital conjugué, tampon, sérumalbumine bovine,
azide de sodium (0.09 %)
R1 est en position B, R2 en position C et R3 en position A.
Précautions d’emploi et mises en garde
Pour diagnostic in vitro.
Observer les précautions habituelles de manipulation en laboratoire.
L’élimination de tous les déchets doit être effectuée conformément aux
dispositions légales.
Fiche de données de sécurité disponible sur demande pour les
professionnels.
Préparation des réactifs
Prêt à l'emploi.
Pour garantir le mélange des constituants du réactif, retourner le flacon de
réactif plusieurs fois avec précaution avant emploi.
Conservation et stabilité
Avant ouverture, entre 2 et 8 °C:
Voir date de péremption sur
l'étiquette du cobas c pack.
A bord, en cours d'utilisation et réfrigéré sur 8 semaines
l'analyseur:
Ne pas congeler.
1/5
0004490754190c501V10.0
BARB
Barbiturates Plus
Prélèvement et préparation des échantillons
Seuls les types d'échantillons indiqués ci‑dessous ont été testés et peuvent
être utilisés.
Urine: Recueillir l’urine dans des récipients propres en verre ou en
plastique. Les échantillons d’urine fraîchement prélevés ne nécessitent
aucun traitement ou prétraitement particulier. Il convient néanmoins d’éviter
la présence de fragments dans les échantillons pipetés. Le pH des
échantillons doit se situer entre 5 et 8 (pH physiologique). L'utilisation
d'additifs ou de conservateurs n'est pas nécessaire. Il est recommandé de
conserver les échantillons d’urine entre 2 et 8 °C et d’effectuer le dosage
dans les 5 jours qui suivent le recueil.9
Pour une conservation prolongée, il est recommandé de congeler les
échantillons.
Centrifuger les échantillons présentant une forte turbidité avant l'analyse.
L'adultération ou la dilution de l’échantillon peut conduire à l’obtention de
résultats erronés. Si l’on suspecte une adultération de l’échantillon, prélever
un nouvel échantillon. Pour les échantillons recueillis selon les Mandatory
Guidelines for Federal Workplace Drug Testing Programs, un test de
validité de l'échantillon est requis.10
ATTENTION: Les dilutions ne doivent être utilisées que pour interpréter les
résultats comportant les alarmes Calc.? ou Echant.? ou pour estimer une
concentration en vue d’une analyse par CG/SM. Les résultats de ces
dilutions ne sont pas destinés à la détermination des taux de patients. Les
procédures de dilution utilisées doivent être validées.
Matériel fourni
Voir paragraphe « Réactifs - composition et concentrations ».
Matériel auxiliaire nécessaire
Voir paragraphe « Références de commande ».
Equipement habituel de laboratoire
cobas c 501/502 Définition du test
Mode de mesure
Qualitatif
Point Final 2
Point Final 2
Temps de dosage/points 10 / 40‑65
de mesure
10 / 40‑65
Longueur d'ondes
(sec/princ)
– /505 nm
– /505 nm
Sens de la réaction
Croissant
Croissant
Unité
ng/mL
mAbs
Pipetage des réactifs
Diluant (H2O)
R1
59 µL
–
R2
59 µL
–
R3
52 µL
–
Volumes échantillon
Echantillon
Dilution échantillon
Echantillon Diluant (NaCl)
Normal
2.5 µL
–
–
Diminué
2.5 µL
–
–
Augmenté
2.5 µL
–
–
Calibration
Réalisation du test
Pour garantir le bon fonctionnement du test, se conformer aux instructions
relatives à l’analyseur utilisé indiquées dans le présent document. Pour les
instructions spécifiques de l’analyseur, se référer au manuel d’utilisation
approprié.
En cas d’utilisation de tests non validés par Roche, les performances
analytiques ne sont pas garanties et doivent être définies par l’utilisateur.
Calibrateurs
0, 100, 200, 400 ng/mL
Application qualitative
S1: C.f.a.s. DAT Qualitative Plus,
C.f.a.s. DAT Qualitative Plus Clinical ou
Calibrateur Preciset DAT Plus I ‑CAL 3
200 ng/mL
La concentration en drogue des calibrateurs a été
vérifiée par CG/SM.
cobas c 311 Définition du test
Semi-quantitatif
Qualitatif
Point Final 2
Point Final 2
Temps de dosage/points 10 / 26‑53
de mesure
10 / 26‑53
Longueur d'ondes
(sec/princ)
– /505 nm
– /505 nm
Sens de la réaction
Croissant
Croissant
Unité
ng/mL
mAbs
Application semi-quantitative
S1‑4: Calibrateurs Preciset DAT Plus I, CAL 1‑4
Application pour l'urine
Pour ces applications, désélectionner la réanalyse automatique dans le
menu Maint/Prog, Application, onglet Limites.
Mode de mesure
Semi-quantitatif
Facteur K de
calibration
Pour l'application qualitative, entrer le facteur K -1000
dans le menu Calibration, Status screen, Calibration
Result window.
Type calibration
Application semi-quantitative
Mode de calcul des résultats (RCM)a
Application qualitative
Pipetage des réactifs
Linéaire
Fréquence des
calibrations
Calibration initiale (test semi-quantitatif) ou
calibration blanc (test qualitatif)
Diluant (H2O)
- à chaque nouveau lot de réactifs
- si le contrôle de qualité l'exige
R1
59 µL
–
R2
59 µL
–
a) Voir paragraphe Résultats.
R3
52 µL
–
Traçabilité: La méthode a été standardisée par rapport à une méthode de
référence primaire (GC/MS).
Volumes échantillon
Echantillon
Dilution échantillon
Echantillon Diluant (NaCl)
Normal
2.5 µL
–
–
Diminué
2.5 µL
–
–
Augmenté
2.5 µL
–
–
Contrôle de qualité
Pour le contrôle de qualité, utiliser les matériaux de contrôle indiqués dans
la section « Références de commande ».
D’autres contrôles appropriés peuvent également être utilisés.
La fréquence des contrôles et les limites de confiance doivent être
adaptées aux exigences du laboratoire. Les résultats doivent se situer dans
les limites de confiance définies. Chaque laboratoire devra établir la
procédure à suivre si les résultats se situent en dehors des limites définies.
2/5
2016-05, V 10.0 Français
0004490754190c501V10.0
BARB
Barbiturates Plus
Les concentrations en drogue de Control Set DAT I et Clinical ont été
vérifiées par CG/SM.
Se conformer à la réglementation gouvernementale et aux directives
locales en vigueur relatives au contrôle de qualité.
Acétone
Bilirubine
0.25 mg/mL
98
Résultats
Pour les tests qualitatifs, le calibrateur seuil est utilisé en référence pour
distinguer les échantillons initialement positifs des échantillons négatifs. Les
échantillons donnant une valeur d'absorbance positive ou égale à «0» sont
considérés comme initialement positifs. Les échantillons initialement positifs
sont affichés avec l'alarme >Test. Les échantillons induisant une valeur
d'absorbance négative sont considérés comme négatifs. Les échantillons
négatifs sont précédés du signe moins.
La détermination semi-quantitative des résultats initialement positifs doit
uniquement être effectuée par le laboratoire afin de déterminer une dilution
appropriée de l'échantillon en vue d'un test de confirmation par une autre
méthode telle que la GC/MS. Elle permet également au laboratoire d'établir
des procédures de contrôle de qualité et d'évaluer les performances de
contrôle.
Pour un test semi-quantitatif, l’ordinateur de l’analyseur établit une courbe
de calibration à partir des mesures d'absorbance des calibrateurs en
utilisant une fonction d’adéquation log‑logit à 4 paramètres (RCM). La
fonction logit‑log trace une droite entre les points obtenus. L’ordinateur de
l’analyseur utilise les valeurs d'absorbance des échantillons pour calculer
les concentrations en drogue ou métabolites de drogue par interpolation de
la fonction log‑logit.
REMARQUE: si l’on obtient des résultats présentant les alarmes Calc.? ou
Echant.?, vérifier le résultat de la courbe réactionnelle obtenue pour
l’échantillon et le comparer avec le résultat de la courbe réactionnelle
obtenue pour le calibrateur le plus élevé. La cause d'erreur la plus probable
est une concentration élevée en analyte dans l’échantillon. Dans ce cas, la
valeur de l’absorbance est inférieure à celle du calibrateur le plus élevé.
Effectuer une dilution appropriée de l’échantillon à l’aide du calibrateur
0 ng/mL et réanalyser l’échantillon. Le calibrateur 0 ng/mL peut être
remplacé par de l'urine exempte de drogue si l'urine et la procédure ont
auparavant été validées par le laboratoire. Pour être sûr que l’échantillon
n’a pas été trop dilué, vérifier, avant de multiplier le résultat par le facteur
de dilution, si la valeur obtenue après dilution est au moins égale à la moitié
de la valeur seuil de l’analyte. Si la valeur obtenue après dilution est
inférieure à cette dernière, effectuer une réanalyse avec une dilution moins
importante de l’échantillon. Une dilution qui conduit à l’obtention d’un
résultat se rapprochant le plus de la valeur seuil de l’analyte conduit à
l’estimation la plus précise. Pour obtenir la concentration d’un échantillon
initialement positif, multiplier le résultat par le facteur de dilution approprié.
Les dilutions ne doivent être utilisées que pour interpréter les résultats
comportant les alarmes Calc.? ou Echant.? ou pour estimer une
concentration en vue d’une analyse par CG/SM.
Le rendu des résultats doit tenir compte des différents facteurs pouvant
influencer les résultats de tests urinaires tels que la quantité de liquide
absorbée ou autres facteurs biologiques.
Comme pour tout test sensible de dépistage de drogues effectué sur
automate de chimie clinique, il peut arriver que l’analyte d’un échantillon
présentant une concentration extrêmement élevée contamine un
échantillon normal (négatif) analysé immédiatement après.
Tout résultat initialement positif devra être confirmé par une autre méthode.
Limites d’utilisation - interférences11
Pour les différentes substances testées, se référer au paragraphe
« Spécificité analytique » du présent document. D’autres substances et/ou
facteurs peuvent interférer avec le test et conduire à des résultats erronés
(erreurs techniques ou de procédure par ex.).
Un résultat initialement positif indique la présence de barbituriques et/ou de
leurs métabolites dans l’urine. Il ne mesure pas le degré d’intoxication.
Des substances interférentes ont été ajoutées à de l’urine exempte de
drogue à la concentration indiquée ci-dessous. Par addition d’une solution
surchargée de sécobarbital, la concentration en sécobarbital de ces
échantillons a été portée à 200 ng/mL. Les échantillons ont été dosés en
triple détermination (n = 3) sur un analyseur Roche/Hitachi cobas c 501. La
médiane (en %) des taux de récupération a été calculée. Les résultats sont
indiqués ci-dessous.
Créatinine
5 mg/mL
100
Ethanol
1 %
100
Glucose
2 %
100
Hémoglobine
7.5 g/L
101
Albumine humaine
0.5 %
99
2 mg/mL
104
0.5 M
105
Chlorure de sodium
1 M
110
Urée
6 %
103
Concentration
testée
Substance
2016-05, V 10.0 Français
Recouvrement
de barbituriques (%)
Acide ascorbique
Acide oxalique
Chlorure de sodium
1 %
97
1.5 %
93
Pour le diagnostic, les résultats doivent toujours être confrontés aux
données de l’anamnèse du patient, au tableau clinique et aux résultats
d’autres examens.
ACTION NÉCESSAIRE
Programmation de lavages spéciaux: Sur les analyseurs
Roche/Hitachi cobas c, certaines combinaisons de tests nécessitent la
programmation d'étapes de lavage spéciales. La dernière version de la liste
de prévention des contaminations (Carry over evasion list) figure dans les
fiches de méthodes NaOHD/SMS/Multiclean/SCCS ou
NaOHD/SMS/SmpCln1+2/SCCS. Pour de plus amples instructions, se
référer au manuel de l'utilisateur. Analyseur cobas c 502: Toutes les
programmations de lavages spéciaux pour la prévention des
contaminations se font via cobas link. Aucune entrée manuelle n'est
nécessaire.
Le cas échéant, la programmation des lavages spéciaux/de prévention
des contaminations doit être implémentée avant d'effectuer le rapport
de ce test.
Valeurs de référence
Test qualitatif
Les résultats de ce test permettent uniquement de distinguer les
échantillons initialement positifs (≥ 200 ng/mL) des échantillons négatifs. La
quantité de drogue contenue dans un échantillon initialement positif ne peut
pas être évaluée.
Test semi‑quantitatif
Les résultats de ce test donnent uniquement la concentration cumulée
approximative de la drogue et de ses métabolites (voir paragraphe
Spécificité analytique).
Performances analytiques
Les performances analytiques indiquées ci-dessous sont représentatives et
ont été obtenues sur un analyseur Roche/Hitachi. Les résultats obtenus au
laboratoire peuvent différer de ceux-ci.
Précision
La précision a été déterminée dans un protocole interne en dosant une
série de calibrateur et de contrôles (répétabilité n = 20, précision
intermédiaire n = 100). Les résultats suivants ont été obtenus sur un
analyseur Roche/Hitachi cobas c 501.
Précision test semi‑quantitatif
Répétabilité
Moyenne
ng/mL
SD
ng/mL
CV
%
Niveau 1
148
3.1
2.1
Niveau 2
193
4.0
2.1
Niveau 3
252
4.3
1.7
Moyenne
ng/mL
SD
ng/mL
CV
%
Niveau 1
150
3.4
2.3
Niveau 2
194
4.1
2.1
Niveau 3
255
4.5
1.7
Précision intermédiaire
3/5
0004490754190c501V10.0
BARB
Barbiturates Plus
Précision test qualitatif
Nombre
testé
Résultats
corrects
Intervalle de confiance
0.75x
100
100
> 95 % résultats négatifs
1.25x
100
100
> 95 % résultats positifs
Seuil (200)
Limite inférieure de détection du test
5.1 ng/mL
La limite inférieure de détection correspond à la plus faible concentration
mesurable en analyte pouvant être distinguée de zéro. Elle est obtenue par
le calcul et correspond à la valeur située 2 écarts-type au-dessus du taux le
plus faible de la gamme de standards (standard 1 + 2s, répétabilité, n = 21).
Exactitude
100 échantillons d’urine, provenant d’un laboratoire hospitalier où ils
avaient été trouvés négatifs dans un panel de détermination de drogues,
ont été déterminés à l’aide du test Barbiturates Plus. 100 % de ces urines
normales ont été trouvées négatives au seuil de 200 ng/mL. 54 échantillons
provenant d’un laboratoire hospitalier où ils avaient été trouvés initialement
positifs à l’aide d’un immunodosage du commerce et confirmés positifs par
CG/SM, ont été déterminés à l’aide du test Barbiturates Plus. 100 % de ces
échantillons ont été trouvés positifs au seuil de 200 ng/mL. Par ailleurs,
10 échantillons ont été dilués de manière à obtenir une concentration en
barbiturique correspondant à 75‑100 % de la valeur seuil et 10 autres
échantillons ont été dilués de manière à obtenir une concentration en
barbiturique correspondant à 100‑125 % de la valeur seuil. Les résultats
situés autour du seuil de positivité dans les études d’exactitude décrites cidessus et ceux obtenus avec les échantillons d’urine positifs dilués ont été
regroupés. Les résultats obtenus avec le test Barbiturates Plus sur
l’analyseur Roche/Hitachi 917 et par CG/SM sont indiqués ci-dessous:
Barbiturates Plus Corrélation clinique (seuil = 200 ng/mL)
Echant.
négatifs
Valeurs CG/SM (ng/mL)
Proche du seuil
578- > 7500
148-151 248-251
Analyseur
Roche/Hitachi
917
Réactions croisées
approx. (%)
Cyclopentobarbital
197
101
Aprobarbital
215
93
Butalbital
281
71
Allobarbital
282
71
Butabarbital
547
37
Pentobarbital
561
36
Amobarbital
702
29
Phénobarbital
925
22
p‑Hydroxyphénobarbital
1039
19
Barbital
1750
11
Acide
1,3‑diméthylbarbiturique
> 100000
0
Méphobarbital
> 100000
< 0.1
Acide barbiturique
> 100000
< 0.01
Hexobarbital
> 100000
< 0.01
Diphénylhydantoïne
> 500000
< 0.02
Glutéthimide
> 500000
< 0.04
Interférences médicamenteuses
Les substances suivantes ont été ajoutées à des aliquotes d’un pool d’urine
humaine normale pour atteindre une concentration finale de 100000 ng/mL.
Aucune de ces substances n’a montré de réaction croisée supérieure à
0.012 %.
Paracétamol
Isoprotérénol
Acide acétylsalicylique
Kétamine
Aminopyrine
Lidocaïne
+
0
6
10
54
Amitriptyline
LSD
-
100
4
0
0
d‑Amphétamine
MDA
l‑Amphétamine
MDMA
Ampicilline
Mélanine
Acide ascorbique
Mépéridine
Aspartame
Méthadone
Atropine
d‑Méthamphétamine
Benzocaïne
l‑Méthamphétamine
Benzoylecgonine
Méthaqualone
(métabolite de la cocaïne)
Méthylphénidate
Benzphétamine
Méthyprylone
Caféine
Morphine
D'autres échantillons cliniques ont été évalués avec ce test sur un
analyseur Roche/Hitachi cobas c 501 et un analyseur Roche/Hitachi 917.
100 échantillons d’urine, provenant d’un laboratoire hospitalier où ils
avaient été trouvés négatifs dans un panel de détermination de drogues,
ont été déterminés à l’aide du test Barbiturates Plus. 100 % de ces
échantillons d’urine normaux ont été trouvés négatifs sur l'analyseur
Roche/Hitachi 917. 55 échantillons d'urine provenant d’un laboratoire
hospitalier où ils avaient été trouvés initialement positifs à l’aide d’un
immunodosage du commerce et confirmés positifs par CG/SM, ont été
déterminés à l’aide du test Barbiturates Plus. Tous les échantillons (100 %)
ont été trouvés positifs sur les analyseurs Roche/Hitachi cobas c 501 et
Roche/Hitachi 917.
Barbiturates Plus Corrélation (seuil = 200 ng/mL)
Analyseur Roche/Hitachi 917
Analyseur cobas c
501
Conc. (ng/mL)
équivalant à
200 ng/mL
de sécobarbital
Substance
Hypochlorite de calcium
Naloxone
+
-
Chlordiazépoxide
Naltréxone
+
55
0
Chloroquine
Naproxène
-
0
100
Chlorphéniramine
Niacinamide
Chlorpromazine
Noréthindrone
Cocaïne
I‑Norpseudoéphédrine
Codéine
Nortriptyline
Désipramine
Oxazépam
Dextrométhorphane
Pénicilline G
Dextropropoxyphène
Phéncyclidine
Spécificité analytique
La spécificité de ce test pour différents barbituriques et des substances de
structure apparentée a été déterminée en établissant des courbes
d’inhibition pour chaque substance indiquée ci-dessous et en définissant la
quantité approximative de chaque substance équivalente au seuil de
200 ng/mL de sécobarbital dans la réactivité du dosage. Les résultats
suivants ont été obtenus sur un analyseur Roche/Hitachi 917.
4/5
2016-05, V 10.0 Français
0004490754190c501V10.0
BARB
Barbiturates Plus
Diazépam
ß‑Phénéthylamine
Diphénhydramine
Phénothiazine
Dopamine
Phentermine
Doxépine
Phénylbutazone
Ecgonine
d‑Phénylpropanolamine
Ecgonine méthylester
d,I‑Phénylpropanolamine
d‑Éphédrine
Procaïne
d,I‑Éphédrine
Prométhazine
I‑Éphédrine
d‑Pseudoéphédrine
Epinéphrine
I‑Pseudoéphédrine
Érythromycine
Quinidine
Estriol
Quinine
Fénoprofène
Sulindac
Furosémide
Tétracycline
Acide gentisique
Acide Δ9 THC‑9‑ carboxylique
Gaïacol glycérol éther
Tétrahydrozoline
Hydrochlorothiazide
Trifluopérazine
p‑Hydroxyamphétamine
Trimipramine
Ibuprofène
Tyramine
Imipramine
Vérapamil
Volume après reconstitution ou
homogénéisation
Les modifications importantes par rapport à la version précédente sont signalées par une barre verticale dans la
marge.
© 2013, Roche Diagnostics
Roche Diagnostics GmbH, Sandhofer Strasse 116, D-68305 Mannheim
www.roche.com
Distribution aux USA par:
Roche Diagnostics, Indianapolis, IN
Service clientèle USA 1-800-428-2336
Références bibliographiques
1 Karch SB, ed. Drug Abuse Handbook. Boca Raton, FL: CRC Press
LLC 1998.
2 Wesson DR, Smith DE. Barbiturates: Their Use, Misuse, and Abuse.
New York, NY: Human Sciences Press 1977.
3 Robinson AE, McDowall RD. The distribution of amylobarbitone,
butobarbitone, pentobarbitone and quinalbarbitone and the
hydroxylated metabolites in man. J Pharm Pharmacol
1979;31:357-365.
4 Hardman JG, Limbird LE, Gilman A, eds. Goodman and Gilman’s The
Pharmacological Basis of Therapeutics. 10th ed. New York, NY:
McGraw Hill Pub Co. 2001.
5 Baselt RC. Disposition of Toxic Drugs and Chemicals in Man. 7th ed.
Foster City, CA: Biomedical Publications 2004.
6 Barbiturates - A Medical Dictionary, Bibliography, and Annotated
Research Guide to Internet Reference. San Diego, CA: ICON Group
International Inc 2004.
7 Armbruster DA, Schwarzhoff RH, Pierce BL, et al. Method comparison
of EMIT II and ONLINE with RIA for drug screening. J Forensic Sci
1993;38:1326-1341.
8 Armbruster DA, Schwarzhoff RH, Hubster EC, et al. Enzyme
immunoassay, kinetic microparticle immunoassay, radioimmunoassay,
and fluorescence polarization immunoassay compared for drugs-ofabuse screening. Clin Chem 1993;39:2137-2146.
9 Toxicology and Drug Testing in the Clinical Laboratory; Approved
Guideline. 2nd ed. (C52-A2). Clinical and Laboratory Standards
Institute 2007;27:33.
10 Mandatory Guidelines for Federal Workplace Drug Testing Programs.
Fed Regist 2008 Nov 25;73:71858-71907.
11 Data on file at Roche Diagnostics.
Dans cette fiche technique, le séparateur décimal pour partager la partie
décimale de la partie entière d'un nombre décimal est un point. Aucun
séparateur de milliers n'est utilisé.
Symboles
Roche Diagnostics utilise les signes et les symboles suivants en plus de
ceux de la norme ISO 15223‑1.
Contenu du coffret
2016-05, V 10.0 Français
5/5