Culture de la morille

Cultivez vos morilles vous-mêmes
Les morilles sont des champignons recherchées dont la rareté ne se dément pas parce
qu'ils sont réfractaires à la culture. Nombreux sont les entrepreneurs qui ont tenté de les
cultivées, avec des résultats généralement décevants. Il existe plusieurs procédés dont
quelques-uns font l'objet de brevets et peut-être sommes-nous très prêts du but. Voici
une méthode qui a fait ses preuves, mais qui exige application et persévérance. 1
1. Garder les morilles aussi fraîches que possible après la cueillette en les conservant
dans un sac, puis les mettre au réfrigérateur lorsque vous rentrez à la maison à 3 à
4°C.
2. Dans un endroit très propre, prendre un trombone stérilisé à l'alcool pour percer la
tige d'un champignon d'apparence saine.
3. Suspendre le champignon par le trombone au-dessus d'un disque de Pétri
contenant de la gélose d'agar-agar :
a. Peptone (jus de viande).............................. .... 10 g
b. - Glucose massé (ou miel) .............................. . 20 g
c. - Agar-agar .............................. ................. 15 g
d. - Chloramphénicol .............................. ......... 0,5 g
e. - Vitamines et facteurs de croissance (= 1 gélule d'ultralevure)
f. - Eau distillée (quantité suffisante pour).............. 1 000 mL
4. Laisser les spores de la morille tomber à la surface du disque. Si vous ne voyez pas
les spores tomber, il faut attendre.
5. Refermer le couvercle du disque et scellez le couvercle ; conserver entre 12° et 26°
C. Retourner le disque pour empêcher l'humidité de s'accumuler sur le couvercle.
Après une période de quelques heures à quelques jours, les spores commencent à
développer les filaments mycéliens (blanc de champignon) qui s'étendront peu à
peu dans la plaque de gélose
1
Le procédé présenté ici a été développée par Gary Mills et présentée dans le cadre de la série de PBS, "Scientific
American Frontiers". La température, l'humidité, le substrat et d'autres paramètres détaillés ont été mis dans le
domaine public par George Robert Trager.
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6. Pour maintenir une croissance rapide, transférer sur un nouveau support nutritif. La
partie la plus intéressante est celle qui pousse sur les bords de la boîte, où les
filaments poussent le plus vite.
7. Segmentation de la gélose pour multiplier le mycellium et transplantation ; lorsque
la plaque est entièrement colonisée, deux crecommandations :
a. découper la gélose en bandes et l'implanter dans de nouvelles boîtes de Pétri, et
ainsi propager indéfiniment votre culture de mycélium,
b. transplanter le mycelium sur un nouveau support fait de graines. Dans tous les
cas, la découpe de la gélose contenant le mycelium se fait à l'aide d'un scalpel ou
d'une lame de rasoir, stérilisé à l'alcool après chaque coupe.
8. Préparation du nouveau substrat : un bon support consiste à utiliser des semences
à gazon (Lolium perenne L.). D'autres céréales comme le colza, les graines de
chanvre (graines pour oiseaux) peuvent être utilisées. Faire un lit de graines de 7cm
dans un récipient et le recouvrir d'eau. Laisser tremper pendant 24 heures.
9. Fabrication du substrat : égoutter soigneusement les graines trempées pendant 24
heures et mélanger avec du terreau, à raison d'une part de terreau pour 5 parts de
céréales. Déposer 2 tasses de ce mélange dans un bocal en verre de
taille moyenne (250 ml).
10. Mettre un couvercle filtrant (style gaze) et la bague et stériliser pendant 1 h à 15 psi
dans un autoclave.
11. Inoculation du nouveau support : nettoyer la surface de travail avec l'eau de Javel
5%, (utiliser une hotte à flux laminaire, si possible). Retirer le disque de filtration du
pot et ajouter rapidement quelques petits morceaux de mycélium de culture sur
gélose (avec une flamme stériliser le scalpel). Remplacer le disque filtrant. Couvrir
le filtre d'une feuille de papier aluminium pour éviter le dessèchement sans
serrer. Restériliser votre scalpel après chaque transfert.
12. Agiter le bocal pour bien mélanger dans le mycélium. Placez le pot dans un endroit
frais (20°C) et sombre pendant environ 4 à 6 semaines. L’apparition de brins
blanchâtres de mycélium en croissance dans le milieu est signe d’une bonne
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croissance. À environ 5 semaines, les sclérotes apparaissent sous forme de petits
agrégats de couleur blanche à rouille.
13. Quand les sclérotes sont visibles dans les bocaux, préparer des plateaux propres à
recevoir le mélange dans une salle de fructification où la température, l'humidité,
l’apport d’air peuvent être contrôlée avec précision.
14. Pour réalisation du substrat de fructification (sur lequel pousseront les morilles), bien
mélanger terreau (15%) et sable (10%), petits copeaux (38% : frêne, chêne, érable,
hêtre, orme, pommier, …), son ou riz (9%), tourteaux de soja (9%), tourbe (4%) en y
ajoutant une petite quantité de chaux pour amener le pH de 7.1 à 7.3.
15. Préparation d'un premier bac : remplir un plat de 25x25cm en alu, style moule à
gâteau ("9-1/4 inch x 9-1/4 aluminium autoclavable") avec des bords de 6,5 cm de
haut ou une bassine en plastique. Le récipient doit être généreusement percé de
trous de drainage. Saturer substrat avec de l'eau. Laisser égoutter complètement.
16. Préparation d'un second bac : remplir un deuxième bac identique au premier, de
semences à gazon drainés jusqu'à une profondeur de 1 à 2 cm (il faut donc percer
les trous de drainage sur les côtés du bac de semences à une hauteur de 4 cm du
fond. Ainsi une couche d'eau de 4cm subsiste.
17. Mettre le bac de substrat SUR le bac de semences. Placer les deux bac plateaux
préparés dans un sac autoclave stérilisé muni d'une fermeture (les sacs de cuisson
semblent bien fonctionner)
18. Nettoyer un plan de travail avec de l'eau de Javel. Mélanger 1 / 2 tasse du substrat
élaboré aux étapes 10 et 12 dans le substrat de fructification (voir Etape 15) en
utilisant une cuillère stérilisée à la flamme. Refermer le sac contenant les deux bacs
superposés et le placer dans un endroit frais (18° à 21°Celsius) et sombre pendant
4-6 semaines.
Au
cours
de
cette
période
d'incubation,
l'humidité
devrait
être maintenue à 90-100%, le CO2 à 6000-9000 ppm, sans échange d'air frais.
19. Obtention des sclérotes : après 4-6 semaines, la surface du substrat se couvre de
sclérotes. Garder au frais (3 ou 4°) les sclérotes (bac à légumes du réfrigérateur).
Ces sclérotes sont viables au plus pendant un an, dans des conditions optimales.
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20. Refroidissement nécessaire : après envahissement par les sclérotes et le "blanc"
(mycélium), stopper la superposition : enlever le bac de semences et mettre le bac
contenant les sclérotes au réfrigération (3 à 4°C) pendant deux semaines.
21. Retirer le bac à sclérotes du réfrigérateur et le placer dans la chambre de
fructification. Lentement, saturer le substrat avec de l'eau stérile tiède (18 à 21°
C).Cette saturation en eau durera pendant 12-16 heures. Ensuite, laisser égoutter
pendant environ 24 heures.
22. Les primordia (en l'occurrence, les pousses de champignons) se feront en 3-7 jours
à humidité du substrat de 60%, humidité de l'air, 95-100% et température de
l'air 23°C. Si possible, filtrer l'air de la pièce pendant 6 ou 8 heures. Cycle de
lumière : éclairage 12H (lampes de serre), obscurité 12H . Maintenir le CO2 à moins
de 900 ppm (parties par million).
23. Semaine suivante : la maturation des champignons : l'humidité du substrat est
réduite à 50%, l'humidité de l'air, à 85-95%, la température de l'air à 23°C.
Le changement d'air par cycle de 6 à 8 heures. Changement d'air, éclairage et CO2
identiques à l'étape 22.
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