DHEA-S - Roche
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DHEA-S - Roche
ms_03000087122V17.1 DHEA-S Sulfate de déhydroépiandrostérone REF SYSTEM 03000087 122 Elecsys 2010 MODULAR ANALYTICS E170 cobas e 411 cobas e 601 cobas e 602 100 Français Domaine d'utilisation Test immunologique pour la détermination quantitative in vitro du sulfate de déhydroépiandrostérone (DHEAS) dans le sérum et le plasma humains. Ce test par électrochimiluminescence « ECLIA » s’utilise sur les systèmes d'immunoanalyse Elecsys et cobas e. Caractéristiques Le DHEAS est un stéroïde sécrété par la zone réticulée et fasciculée du cortex surrénalien à partir du cholestérol.1 La détermination du DHEAS est une aide diagnostique lors d’hirsutisme et de virilisme.2,3 Hormis son utilité lors du diagnostic différentiel hirsutisme/virilisme, elle est indiquée dans toutes les formes de masculinisation, lors d’hyperprolactinémie, de syndrome ovarien polykystique ainsi que pour la discrimination d’une tumeur de la corticosurrénale sécrétant des hormones androgènes.2 Le DHEAS a un pouvoir androgène assez faible mais il peut se métaboliser dans des hormones stéroïdes masculinisantes plus puissantes comme l’androstènedione et la testostérone et peut donc être indirectement à l’origine d’hirsutisme et de virilisme.2,4 Les concentrations en DHEAS augmentent à partir de l’âge de 7 ans et diminuent graduellement après l’âge de 30 ans.5 Seules les concentrations élevées présentent un intérêt clinique. La production excessive de DHEAS peut être due à un déficit enzymatique corticosurrénal congénital (syndrome génito‑surrénal)6, à une hyperplasie de la corticosurrénale ou à une tumeur sécrétant des hormones androgènes.2 La vitesse de sécrétion de DHEAS dans le sang n’est que légèrement supérieure à celle de la DHEA. Cependant, du fait de la demi‑vie de presque un jour du DHEAS, le taux de ce dernier est d’environ 1000 fois supérieur à celui de la DHEA.7 Le DHEAS existe en proportion relativement forte sous forme liée à l’albumine; une part infime de DHEAS circule sous forme non liée. Il n’apparaît jamais sous forme liée à la SHBG (Sex Hormone Binding Globulin).8 De par sa concentration élevée et ses faibles variations nycthémérales et au jour le jour, il constitue un indicateur excellent de la production androgénique cortico‑surrénalienne.7,9 Pour le diagnostic initial d’un hirsutisme, il est recommandé d’associer les dosages de DHEAS et de testostérone. Chez environ 84 % des femmes présentant un hirsutisme, les taux d’androgènes sont élevés.10 L’intérêt du dosage est d’exclure la présence d’une tumeur maligne sécrétante (surrénalienne ou ovarienne). Une telle tumeur est suspectée chez les femmes dont le taux de DHEAS est supérieur à 700 µg/dL.6 Le test Elecsys DHEA‑S fait appel à un principe de compétition. Il utilise un anticorps polyclonal (de lapin) spécifique dirigé contre le DHEAS. Le DHEAS endogène de l’échantillon entre en compétition avec le DHEAS exogène (dérivé de DHEAS marqué au ruthéniuma) pour les sites de liaison de l’anticorps biotinylé. ▪ Les résultats sont obtenus à l’aide d’une courbe de calibration. Celle-ci est générée, pour l’analyseur utilisé, par une calibration en 2 points et une courbe de référence mémorisée dans le code-barres du réactif. Réactifs - composition et concentrations Le rackpack réactif est étiqueté DHEA‑S. M R1 Ac anti-DHEAS~biotine, 1 flacon (bouchon gris), 9 mL: anticorps (polyclonal de lapin) anti‑DHEAS marqué à la biotine 600 ng/mL; tampon phosphate 100 mmol/L, pH 6.8; conservateur R2 DHEAS~Ru(bpy) 1 flacon (bouchon noir), 9 mL: dérivé synthétique de DHEAS marqué au ruthénium 0.5 ng/mL; tampon phosphate 100 mmol/L, pH 6.8; conservateur Précautions d’emploi et mises en garde Pour diagnostic in vitro. Observer les précautions habituelles de manipulation en laboratoire. L’élimination de tous les déchets doit être effectuée conformément aux dispositions légales. Fiche de données de sécurité disponible sur demande pour les professionnels. Éviter la formation de mousse dans les réactifs et les échantillons de tous types (échantillons de patients, calibrateurs et contrôles). Préparation des réactifs Les réactifs contenus dans le coffret sont prêts à l’emploi et ne peuvent être utilisés séparément. Toutes les informations nécessaires au déroulement du test sont mémorisées sur le code-barres des flacons de réactifs et doivent être saisies. Conservation et stabilité Conservation entre 2 et 8 °C. Ne pas congeler. Ranger le coffret de réactifs Elecsys en position verticale, de manière à ce que toutes les microparticules soient rassemblées pour l’homogénéisation qui précède l’analyse. Stabilité: a) Ru(bpy) : Tris(2,2'-bipyridyl)ruthénium(II) Principe Principe de compétition. Durée totale du cycle analytique: 18 minutes ▪ 1ère incubation: 15 µL d'échantillon sont incubés avec un anticorps spécifique de DHEAS biotinylé. Il se forme un complexe immun en relation avec la concentration en analyte contenue dans l’échantillon. ▪ 2ème incubation: Le DHEAS marqué au ruthénium est ajouté dans la cuvette réactionnelle avec les microparticules tapissées de streptavidine et vient se fixer sur les sites encore disponibles de l’anticorps biotinylé avec formation d'un complexe anticorps‑haptène. Le complexe immun est fixé à la phase solide par une liaison biotine‑streptavidine. ▪ Le mélange réactionnel est transféré dans la cellule de mesure, les microparticules sont maintenues au niveau de l’électrode par un aimant. L’élimination de la fraction libre est effectuée par le passage de ProCell/ProCell M. Une différence de potentiel appliquée à l’électrode déclenche la production de luminescence qui est mesurée par un photomultiplicateur. 2014-01, V 17.1 Français Microparticules tapissées de streptavidine, 1 flacon (bouchon transparent), 6.5 mL: Microparticules tapissées de streptavidine 0.72 mg/mL, conservateur avant ouverture, entre 2 et 8 °C jusqu’à la date de péremption indiquée après ouverture, entre 2 et 8 °C 12 semaines sur les analyseurs 8 semaines Prélèvement et préparation des échantillons Seuls les types d'échantillons indiqués ci-dessous ont été testés et peuvent être utilisés. Sérum recueilli sur tubes de prélèvement standard ou contenant un gel séparateur. Plasma recueilli sur héparinate de lithium, de sodium, d’ammonium, EDTA tripotassique, citrate de sodium, fluorure de sodium et oxalate de potassium. Critère d’acceptabilité: Recouvrement entre 90 et 110 % de la valeur du sérum ou pente entre 0.9 et 1.1 + ordonnée à l’origine < ± 2x limite de détection + coefficient de corrélation > 0.95. Stabilité: 2 jours entre 2 et 8 °C, 2 mois à -20 °C. Ne congeler qu'une fois.11, 12 1/4 ms_03000087122V17.1 DHEA-S Sulfate de déhydroépiandrostérone Les différents types d’échantillons indiqués ci-dessus ont été testés à l’aide d’une sélection de tubes de prélèvement disponibles dans le commerce au moment du test: les tubes de prélèvement des différents fabricants n’ont pas tous été testés. Les systèmes de prélèvement du sang de divers fabricants peuvent contenir différents matériaux pouvant, dans certains cas, influencer le résultat du test. En cas d’utilisation de tubes primaires (systèmes de prélèvement du sang), suivre les instructions données par le fabricant. Les échantillons qui contiennent un précipité doivent être centrifugés avant l’analyse. Ne pas utiliser d’échantillons inactivés par la chaleur. Les échantillons ou contrôles stabilisés par de l’azide ne doivent pas être utilisés. S’assurer avant l’analyse que la température des échantillons de patients, des calibrateurs et des contrôles se situe entre 20 et 25 °C. En raison des risques d’évaporation, il est recommandé de doser les échantillons, les contrôles et les calibrateurs dans les 2 heures qui suivent leur mise en place sur les analyseurs. Matériel fourni Voir paragraphe « Réactifs - composition et concentrations ». Matériel auxiliaire nécessaire ▪ REF 03000095122, DHEA‑S CalSet, pour 4 x 1 mL ▪ REF 11731416190, PreciControl Universal, pour 2 x 3 mL de PreciControl Universal 1 et 2 x 3 mL de PreciControl Universal 2 ▪ REF 11731416160, PreciControl Universal, pour 2 x 3 mL de PreciControl Universal 1 et 2 x 3 mL de PreciControl Universal 2 (pour les USA) ▪ Equipement habituel de laboratoire ▪ Analyseur Elecsys 2010, MODULAR ANALYTICS E170 ou cobas e Matériel auxiliaire pour les analyseurs Elecsys 2010 et cobas e 411: ▪ ▪ REF 11662988122, ProCell, 6 x 380 mL, tampon système REF 11662970122, CleanCell, 6 x 380 mL, solution de lavage pour la cellule de mesure ▪ REF 11930346122, Elecsys SysWash, 1 x 500 mL, additif à la solution de lavage ▪ REF 11933159001, Adaptateur pour SysClean ▪ REF 11706802001, Elecsys 2010 AssayCup, 60 x 60 cuvettes réactionnelles ▪ REF 11706799001, Elecsys 2010 AssayTip, 30 x 120 embouts de pipette Matériel auxiliaire pour les analyseurs MODULAR ANALYTICS E170, cobas e 601 et cobas e 602: ▪ ▪ REF 04880340190, ProCell M, 2 x 2 L, tampon système REF 04880293190, CleanCell M, 2 x 2 L, solution de lavage pour la cellule de mesure ▪ REF 03023141001, PC/CC‑Cups, 12 godets pour la thermorégulation de ProCell M et CleanCell M avant emploi ▪ REF 03005712190, ProbeWash M, 12 x 70 mL, solution de lavage de l’aiguille en fin de série et entre les changements de réactifs ▪ REF 03004899190, Elecsys SysClean, 5 x 600 mL solution de lavage du système ▪ REF 12102137001, AssayTip/AssayCup Combimagazine M, 48 blocs de 84 tubes à essai/embouts de pipettes, sacs pour déchets ▪ REF 03023150001, WasteLiner (sacs pour déchets) ▪ REF 03027651001, SysClean Adapter M, adaptateur pour SysClean Pour tous les analyseurs: ▪ REF 11298500316, Elecsys SysClean, 5 x 100 mL solution de lavage du système ▪ REF 11298500160, Elecsys SysClean, 5 x 100 mL, solution de lavage du système (pour les USA) Réalisation du test Pour garantir le bon fonctionnement du test, se conformer aux instructions relatives à l’analyseur utilisé indiquées dans le présent document. Pour les instructions spécifiques de l’analyseur, se référer au manuel d’utilisation approprié. L’analyseur effectue automatiquement l’homogénéisation des microparticules. Les paramètres spécifiques du test mémorisés dans le code-barres doivent être saisis. Si, exceptionnellement, le code-barres ne peut être lu par l’appareil, saisir manuellement la série des 15 chiffres inscrits sur l’étiquette. Analyseurs MODULAR ANALYTICS E170, cobas e 601 et cobas e 602: L'utilisation de la solution PreClean M est nécessaire. Amener les réactifs réfrigérés à env. 20 °C avant le chargement et les placer dans le plateau réactifs de l’appareil thermostaté à 20 °C. Éviter la formation de mousse. L’analyseur gère le contrôle de la température, l’ouverture et la fermeture des flacons. Calibration Traçabilité: La méthode a été standardisée par rapport à des calibrateurs de référence dont la concentration en DHEAS a été définie par gravimétrie dans une matrice de sérum humain exempt d’analyte. Le code-barres des réactifs Elecsys contient toutes les informations nécessaires à la calibration du lot. La courbe de référence est adaptée à l'analyseur à l’aide du CalSet respectif. Fréquence des calibrations: Effectuer une calibration par lot en utilisant du réactif frais (ayant été enregistré depuis au maximum 24 heures sur l'analyseur). Une nouvelle calibration est recommandée: ▪ après 1 mois (28 jours) pour un même lot de réactif ▪ après 7 jours pour un même flacon de réactif resté sur l’analyseur ▪ si nécessaire: par ex. si les résultats du contrôle de qualité se situent en dehors des limites de confiance définies. Contrôle de qualité Utiliser PreciControl Universal. D’autres contrôles appropriés peuvent également être utilisés. Il est recommandé de doser les sérums de contrôle en simple au moins une fois toutes les 24 heures pendant une routine, pour chaque nouveau coffret et après chaque calibration. La fréquence des contrôles et les limites de confiance doivent être adaptées aux exigences du laboratoire. Les résultats doivent se situer dans les limites de confiance définies. Chaque laboratoire devra établir la procédure à suivre si les résultats se situent en dehors des limites définies. Se conformer à la réglementation gouvernementale et aux directives locales en vigueur relatives au contrôle de qualité. Calcul des résultats L'analyseur calcule automatiquement la concentration en analyte de chaque échantillon. Les résultats sont exprimés au choix en µmol/L, µg/dL ou µg/mL. Facteurs de conversion: µmol/L x 36.846 = µg/dL µg/dL x 0.02714 = µmol/L µg/dL x 0.01 = µg/mL Limites d’utilisation - interférences Le test n'est pas influencé par l'ictère (bilirubine < 222 µmol/L ou < 13 mg/dL), l'hémolyse (Hb < 0.35 mmol/L ou < 0.56 g/dL), la lipémie (Intralipid < 2000 mg/dL) et la biotine < 123 nmol/L ou < 30 ng/mL. Critère d’acceptabilité: Recouvrement ± 10 % de la valeur initiale. Chez les patients traités par de fortes doses de biotine (> 5 mg/jour), il est recommandé d’effectuer le prélèvement de l’échantillon au moins 8 heures après la dernière administration. Le résultat n’est pas influencé par le facteur rhumatoïde jusqu’à une concentration de 600 UI/mL. L’influence de 17 médicaments fréquemment administrés a été recherchée in vitro. Aucune interférence n’a été observée. Dans de rares cas, des titres très élevés d’anticorps dirigés contre des anticorps spécifiques de l'analyte, des anticorps anti-streptavidine ou anti‑ruthénium peuvent conduire à des interférences. Ces effets sont minimisés dans le test par un procédé approprié. 2/4 2014-01, V 17.1 Français ms_03000087122V17.1 DHEA-S Sulfate de déhydroépiandrostérone 50ème percentile Pour le diagnostic, les résultats doivent toujours être confrontés aux données de l’anamnèse du patient, au tableau clinique et aux résultats d’autres examens. Âge (en années) n Limites et intervalles Domaine de mesure 0.003‑27.0 µmol/L ou 0.100‑1000 µg/dL (défini par la limite inférieure de détection et le maximum de la courbe de référence). Les taux situés au‑dessous de la limite inférieure de détection sont exprimés de la manière suivante: < 0.003 µmol/L (< 0.100 µg/dL). Les taux situés au‑dessus du domaine de mesure sont exprimés de la manière suivante: > 27.0 μmol/L (> 1000 µg/dL) ou jusqu'à 135 μmol/L (5000 µg/dL) pour les échantillons dilués (au 1/5). Limites de linéarité: 1.09‑27.0 µmol/L ou 40‑1000 µg/dL Limites inférieures de mesure Limite inférieure de détection du test Limite inférieure de détection: 0.003 µmol/L (0.100 µg/dL) La limite inférieure de détection correspond à la plus faible concentration mesurable en analyte pouvant être distinguée de zéro. Elle est obtenue par le calcul et représente la concentration du standard le plus faible de la courbe de référence + 2 écarts-type (calibrateur de référence, standard 1 + 2s, répétabilité, n = 21). 55-64 69 65-74 55 ≥ 75 Dilution Les échantillons présentant une concentration en DHEAS située au‑dessus du domaine de mesure peuvent être dilués avec des échantillons humains à faible concentration en analyte. Rapport de dilution recommandé: 1/5. La concentration de l’échantillon dilué doit être > 1.5 µmol/L ou > 45 µg/dL. En cas de concentration en DHEAS endogène négligeable, calculer le résultat en multipliant la concentration obtenue par le facteur de dilution ou à partir de la formule suivante: C = c + 4 (c - D) C = concentration en DHEAS dans l’échantillon c = concentration en DHEAS mesurée D = concentration en DHEAS du milieu de dilution (sang humain) n 50ème percentile µg/dL µmol/L µg/dL 73 3.34 123 0.92-7.60 33.9-280 15-19 55 4.26 157 1.77-9.99 65.1-368 20-24 36 6.46 238 4.02-11.0 148-407 25-34 64 4.96 183 2.68-9.23 98.8-340 35-44* 85 4.38 161 1.65-9.15 60.9-337 45-54* 89 3.28 121 0.96-6.95 35.4-256 55-64 59 2.08 76.7 0.51-5.56 18.9-205 65-74 29 1.75 64.4 0.26-6.68 9.40-246 ≥ 75 29 1.65 60.9 0.33-4.18 12.0-154 10-14 74 2.74 101 0.66-6.70 24.4-247 15-19 67 7.57 279 1.91-13.4 70.2-492 20-24 28 9.58 353 5.73-13.4 211-492 25-34 60 7.68 283 4.34-12.2 160-449 35-44 70 6.00 221 2.41-11.6 88.9-427 45-54 45 5.94 219 1.20-8.98 44.3-331 µg/dL 3.75 138 1.40-8.01 51.7-295 2.45 90.2 0.91-6.76 33.6-249 21 1.53 56.2 0.44-3.34 16.2-123 < 1 semaine 37 7.60 280 2.93-16.5 108-607 1 à 4 semaines 25 3.91 144 0.86-11.7 31.6-431 1 à 12 mois 69 0.59 21.6 0.09-3.35 3.4-124 1 à 4 ans 59 0.14 5.0 0.01-0.53 0.47-19.4 5 à 9 ans 79 0.63 23.1 0.08-2.31 2.8-85.2 Les taux de DHEAS des nouveau‑nés sont fortement influencés par l’échange hormonal au niveau du placenta. Chaque laboratoire devra vérifier la validité de ces valeurs et établir au besoin ses propres domaines de référence selon la population examinée. Performances analytiques Les performances analytiques indiquées ci-dessous sont représentatives. Les résultats obtenus au laboratoire peuvent différer de ceux-ci. Précision La précision a été déterminée à l’aide de réactifs Elecsys, de pools de sérum humain et de contrôles, selon un protocole (EP5‑A) du CLSI (Clinical and Laboratory Standards Institute). Chaque échantillon a été analysé 6 fois par jour pendant 10 jours (n = 60); répétabilité sur l'analyseur MODULAR ANALYTICS E170 (n = 21). Les résultats suivants ont été obtenus: Analyseurs Elecsys 2010 et cobas e 411 Répétabilité Echan tillon SHb) Femmes: 10-14 µmol/L * L’influence de la ménopause a été recherchée chez les femmes de la tranche d’âge concernée et peut être né gligée. 5-95ème percentile µmol/L µg/dL Enfants: Valeurs de référence Des études sur le test Elecsys DHEA‑S, réalisées dans deux centres hospitaliers allemands à partir de 519 échantillons de sujets féminins, de 489 échantillons de sujets masculins et de 269 échantillons d’enfants, ont permis d’établir les valeurs suivantes pour les différentes tranches d’âge (études No. C00P032 et C01P005, mai à novembre 2001): Âge (en années) 1 Moyenne SD Précision intermédiaire CV SD CV % µmol/L µg/dL % µmol/L µg/dL µmol/L µg/dL 3.18 117 0.09 3.28 2.8 0.11 4.16 3.6 SH 2 10.7 395 0.26 9.46 2.4 0.50 18.4 4.7 SH 3 26.7 984 0.46 17.0 1.7 0.63 23.3 2.4 PC Uc)1 4.15 153 0.09 3.33 2.2 0.11 3.99 2.6 PC U2 3.34 123 0.09 3.41 2.8 0.10 3.83 3.1 b) SH = Sérum humain c) PC U = PreciControl Universal Analyseurs MODULAR ANALYTICS E170, cobas e 601 et cobas e 602 Répétabilité Echan tillon Hommes: Moyenne SD CV µmol/L µg/dL µmol/L µg/dL % SH 1 2.60 96.0 0.08 3.03 3.2 SH 2 10.9 402 0.29 10.5 2.6 SH 3 21.3 784 0.49 18.0 2.3 PC U1 5.81 214 0.10 3.60 1.7 PC U2 14.1 519 0.21 7.71 1.5 Analyseurs MODULAR ANALYTICS E170, cobas e 601 et cobas e 602 Précision intermédiaire Echan tillon SH 1 2014-01, V 17.1 Français µmol/L 5-95ème percentile 3/4 Moyenne SD CV µmol/L µg/dL µmol/L µg/dL % 2.53 93.2 0.06 2.29 2.5 ms_03000087122V17.1 DHEA-S Sulfate de déhydroépiandrostérone Analyseurs MODULAR ANALYTICS E170, cobas e 601 et cobas e 602 Précision intermédiaire Echan tillon Moyenne SD CV µmol/L µg/dL µmol/L µg/dL % SH 2 10.7 395 0.29 10.6 2.7 SH 3 20.4 753 0.48 17.7 2.4 PC U1 5.69 210 0.14 4.99 2.4 PC U2 13.6 501 0.29 10.8 2.2 Comparaison de méthodes Une comparaison du test Elecsys DHEA‑S (y) avec un test DHEA‑S du commerce (x), effectuée sur des échantillons cliniques, a donné les corrélations suivantes (en µg/dL): Nombre d’échantillons analysés: 603 Passing/Bablok13 Régression linéaire y = 1.06x - 4.78 y = 0.94x + 14.0 τ = 0.865 r = 0.952 Les concentrations des échantillons étaient situées entre 0.33 et 19.8 µmol/L (12 et 730 µg/dL). Spécificité analytique Le dérivé d'anticorps utilisé dans le test présente les réactions croisées suivantes (en %): a) Substance rajoutée à raison de 1000 µg/dL: Androstendione 0.399 DHEA 0.178 b) Substance rajoutée à raison de 2000 µg/dL: Androstérone 0.033 Testostérone 0.033 4 Mooradian AD, Morley JD, Korenman SG. Biological Actions of Androgens. Endocr Rev 1987;8(1):1-28. 5 Zappulla F, Ventura D, Capelli M, et al. Gonadal and adrenal secretion of dehydroepiandrosterone sulfate in prepubertal and pubertal subjects. J Endocrinol Invest 1981;4:197-202. 6 Ziegler R. Endokrinologische Erkrankungen. In: Schettler G ed. Innere Medizin, 7. Ausgabe Thieme Stuttgart. 1987;434-437. 7 Haning RV. Using DHEAS to monitor androgen disorders. Contemp Ob/Gyn 1981;18(9):117-131. 8 Longcope C. Dehydroepiandrosterone metabolism. J Endocrinol 1996;150:S125-S127. 9 Lobo RA, Paul WL, Goebelsmann U. Dehydroepiandrosterone Sulfate as an Indicator of Adrenal Androgen Function. Obstet Gynecol 1981;57(1):69-73. 10 Lobo RA, Paul WL, Goebelsmann U. Serum Levels of DHEAS in Gynecologic Endocrinopathy and Infertility. Obstet Gynecol 1981;57(5):607-612. 11 DG Klinische Chemie Mitteilungen 1995;26(5):210. 12 Wu AHB. Tietz Clinical Guide To Laboratory Tests, 4th Edition, WB Saunders Co, 2006:334 pp. 13 Bablok W, Passing H, Bender R, et al. A general regression procedure for method transformation. Application of linear regression procedures for method comparison studies in clinical chemistry, Part III. J Clin Chem Clin Biochem 1988 Nov;26(11):783-790. Pour de plus amples informations, se référer au manuel d'utilisation de l'analyseur concerné, aux fiches techniques respectives, au dossier « Product Information » et aux notices d'utilisation de tous les réactifs nécessaires disponibles dans votre pays. Dans cette fiche technique, le séparateur décimal pour partager la partie décimale de la partie entière d'un nombre décimal est un point. Aucun séparateur de milliers n'est utilisé. Symboles Roche Diagnostics utilise les signes et les symboles suivants en plus de ceux de la norme ISO 15223‑1. c) Substance rajoutée à raison de 5000 µg/dL: CONTENT Contenu du coffret SYSTEM Analyseurs/appareils compatibles avec les réactifs Aldostérone 0.008 Androstérone-glucuronide 0.014 Réactif Sulfate d’androstérone 0.137 Calibrateur DHEA-glucuronide 0.020 Volume après reconstitution ou homogénéisation Estradiol 0.005 Estradiol-3-sulfate-17-glucuronide 0.009 Estriol 0.006 Estrone 0.012 Estrone-3-sulfate 0.136 Progestérone 0.034 5-α-Dihydrotestostérone 0.028 19-Hydroxyandrostèndione 0.018 Les modifications importantes par rapport à la version précédente sont signalées par une barre verticale dans la marge. © 2013, Roche Diagnostics Roche Diagnostics GmbH, Sandhofer Strasse 116, D-68305 Mannheim www.roche.com Assemblé et distribué par: Roche Diagnostics, Indianapolis, Service clientèle IN USA 1-800-428-2336 d) Substance rajoutée à raison de 10000 µg/dL: Cortisol 0.004 Références bibliographiques 1 Bindlingmaier F. Nebennierenrindenhormone. In: Greiling H, Gressner AM (ed.). Lehrbuch der Klinischen Chemie und Pathobiochemie. 3. Auflage, Stuttgart; New York: Schattauer 1995:1025-1031,1036. 2 Goldfien A, Monroe SE. Ovaries. In: Greenspan FS, Baxter JD (eds), Basic & Clinical Endocrinology, 4th edition, Appleton & Lange, USA 1994; Chapter 10:419-470. 3 Hatch R, Rosenfield RL, Kim MH, et al. Hirsutism: implications, etiology, and managment. Am J Obstet Gynecol 1981;140:815-830. 4/4 2014-01, V 17.1 Français