Manuel de prélèvement

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Manuel de prélèvement
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MONTAUROUX
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MANUEL DE
PRELEVEMENT
Laboratoire de
Biologie Médicale
Oceasoft
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SOMMAIRE
Sommaire................................................................................................... 1
Résumé des modifications……………………………………………….2
Présentation du laboratoire……………………………………………..3
Traitement des demandes d’examens…………………………………..4
1-Demandes traitées au laboratoire
2-Gestion de l’urgence médicale
3-Informations obligatoires
Prélèvement ……………………………………………………………..9
1-Fiche de prélèvement / Fiche de suivi médical
2-Prélèvements sanguins
3-Recueils urinaires
4-Prélèvements destinées à la microbiologie et autres
Identification des prélèvements…………………………………….….21
Transport ……………………………………………………….………22
1-Conditions de transport
2-Délais d’acheminement
3-Température d’acheminement
Hygiène & Sécurité……………………………………….…………….23
1-Gestion des déchets
2-Incidents de prélèvements
3-Conduite à tenir en cas d’accidents d’exposition au sang
Rendu des résultats................................................................................ 26
Catalogue des examens ………………………………..………………27
Version 4
Les modifications sont annotées dans la marge à gauche par un trait vertical
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Résumé des modifications
Modification de l’adresse du site de Fréjus LOU GABIAN (p3)
Correction de l’erreur de signe pour le temps de pose du garrot pour l’Hémostase (p27)
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Présentation du laboratoire
Site de Montauroux :
Dr BARTOLO Aurore
Le plan oriental - Bâtiment B – RD 562 – 83440 MONTAUROUX
Coordonnées : Tel : 04.94.50.28.43 / Fax : 04.94.99.15.69
Site de Fayence :
Dr TREIL Antoine
104 Chemin de Draguignan – 83440 FAYENCE
Coordonnées : Tel : 04.94.39.22.22 / Fax : 04.94.84.17.54
Site de Fréjus LOU GABIAN:
Dr ZANCHI Romain
364 LOU GABIAN 83600 Fréjus
Coordonnées : Tel : 04.94. 85.76.64 / Fax : 04.94.85.76.61
Site de Peymeinade :
Dr ALEX Stéphanie
13 avenue Fréderic Mistral - 06530 Peymeinade
Coordonnées : Tel : 04.93.66.34.07 / Fax : 04.93.66.02.42
Site Fréjus Vinci :
Dr ARNAUD Roger
359 avenue de Triberg - 83600 FREJUS
Coordonnées : Tel : 04.94.51.83.51 / Fax : 04.94.53.03.53
Site de Nice :
Dr COLLET Guillaume
36 boulevard Paul Montel - Résidence l’Alandier - 06200 Nice
Coordonnées : Tel : 04 93 83 46 46 / Fax : 04 93 18 86 43
Site internet du laboratoire :
ilab-analyses.fr
Pour les préleveurs externes, consultation du présent manuel sur le site
http://www.labzero.fr/ilab
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Traitement des demandes d’examens
1. Demandes traitées au laboratoire
Type de demande
Documents nécessaires
Infos nécessaires
Carte vitale à jour*
Au nom du patient
Mutuelle *(le cas échéant)
En cours de validité
Ordonnance*
-Identification univoque du patient
(Nom/Prénom/Date de naissance à
minima)
-Nom ou identification unique du
prescripteur
-Type d’échantillon (plasma, sérum,
Patients venant au
laboratoire
Ou
urine…)
-Examens prescrits
-Signature du médecin
Enregistrement des
demandes formulées
oralement et hors
nomenclature
Coordonnées sécu +
mutuelles (le cas échéant) *
Patient prélevé à
l’extérieur par
professionnel de
santé (IDE,
médecin…)
Demande provenant
d’un laboratoire
partenaire (soustraitance)
Remplie et visée par le patient,
scannée dans son dossier
Pareil que précédemment
Ordonnance *
Pareil que précédemment
Fiche de suivi médical
Complétée avec à minima les
données suivantes : Nom + Nom de
naissance, Prénom patient, Date de
naissance, Sexe, Identité préleveur,
Date et heure de prélèvement,
notion d’urgence (le cas échéant)
Feuille de transmission
Numéro de l’échantillon + Nom +
Prénom patient + examens
demandés
* En cas de non-présentation de ces documents, au plus tard à l’occasion de la remise des résultats,
le laboratoire sera amené à facturer tout ou partie du dossier.
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2. Gestion de l’urgence médicale
Les urgences sont traitées en priorité dans le cas où la mention est formalisée par le
prescripteur sur l’ordonnance, sur demande justifiée du patient ou à l’initiative du préleveur
et/ou du biologiste s’il juge l’état de santé du patient préoccupant.
Pour les prélèvements hors du laboratoire, les préleveurs sont priés d’attirer l’attention du
secrétariat sur la notion d’urgence associée au prélèvement déposé (en plus de la notification
sur la fiche de prélèvement.)
Pour toute demande urgente, une « Fiche d’urgence » est identifiée et suit le prélèvement
jusqu’à la validation des résultats.
3. Informations obligatoires
Certains examens demandent d’être effectués dans des conditions particulières :
 Jeun (glycémie, bilan lipidique)
 Renseignements particuliers
 Consentements
Ces conditions, à respecter scrupuleusement, conditionnent la qualité du résultat.
Elles sont rappelées systématiquement à tout patient au moment de l’accueil ou en salle de
prélèvement.
Les renseignements cliniques sont en général recueillis par le préleveur en salle de
prélèvement (ex : interférences avec des médicaments ou des aliments, dosage de
médicaments, interférence de certains médicaments avec la thyroïde, interférences de certains
aliments dans les traitements anticoagulants, notion de voyage, origine géographique, etc.)
Enfin certaines demandes d’examens doivent être accompagnées de feuilles de consentement
(voir exemples ci-après) co-signées par le médecin et le patient, le plus souvent destinées à
des laboratoires spécialisés (tri-test, recherche d’anomalie chromosomique, etc.). Le
laboratoire se charge d’entreprendre toute démarche à postériori (en cas de prélèvement hors
du laboratoire).
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Le JEUN :
Un jeun strict est obligatoire pour les examens suivants :
 Glycémie
 Bilan lipidique : Cholestérol total, HDL, Triglycérides
Des conditions non à jeun peuvent être acceptées pour ces examens lorsque :
 Il s’agit d’une demande urgente,
 Le prescripteur l’exige
 Le patient souhaite quand même réaliser l’examen
Dans ces cas, un commentaire « Patient non à jeun » est mis sur le dossier patient (par le code
« OBSERV »). Celui-ci sera présent sur le compte-rendu de résultat.
Examens nécessitant renseignements :
Catégorie d’analyses
Renseignements à obtenir
Traitement en cours
Heure de prélèvement ou recueil/ Heure de réception au laboratoire
Heure de prélèvement ou recueil/ Heure de réception au laboratoire
Origine géographique
Voyage ? Dans quel pays ?
Parasitologie et mycologie Immuno-dépression
Antécédents pathologiques
Principaux signes cliniques, traitements en cours
Bactériologie et virologie
 Posologie et nombre de prise quotidienne
Dosage de médicaments
 Date et heure de dernière prise
 Nom du médicament
Hormonologie
Date des dernières règles et/ou absence de règles et/ou traitement
Hémostase
Nature des anticoagulants
Biochimie : Calcul de
Crokcroft
Poids du patient
Biochimie : CKD-EPI
Age, Sexe
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Biochimie : MDRD
Couleur de la peau, âge et sexe
Marqueurs
Est-ce pour un suivi ? Traitement en cours ?
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Consentements :
Certains examens nécessitent le consentement éclairé du patient pour leur réalisation.
Ils sont réalisés dans les laboratoires de biologie spécialisée et concernent pour la plupart les
diagnostics génétiques (dépistage T21, HLA B27…) et le dosage des marqueurs spécifiques.
Pour chaque demande, le laboratoire s’assure de la présence du consentement signé par le
patient et le médecin.
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Figure 1: Feuille de consentement CERBA, dépistage T21
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Prélèvements
1. Fiche de prélèvement / Fiche de suivi médical
Une fiche de prélèvement (exigence de la norme NF EN ISO 15189) est éditée pour chaque
prélèvement au laboratoire. Elle doit contenir les informations nécessaires pour identifier le
patient et le prescripteur autorisé. Elle doit également fournir des données cliniques
pertinentes. Elle comprend les items suivants :
 Nom, prénom, date de naissance (et éventuellement nom de jeune fille), adresse,
téléphone ;
 Nom du ou des prescripteurs
 La liste codée des examens prescrits avec séparation des examens effectués au
laboratoire des examens sous-traités
 Les éléments cliniques pertinents (raisons de l’ALD, notion de traitement lors du
dosage des hormones thyroïdiennes ou de marqueurs tumoraux, notion de prise de
médicaments et/ou posologie, contexte de la demande, etc.)
 Le paraphe du préleveur
Cette fiche est éditée en même temps que des étiquettes de marquage des différents
échantillons. Chaque étiquette doit être constituée à minima :
 Du sexe, nom, prénom, nom de jeune fille en cas de groupe, date de naissance
 Du jour et de l’heure du prélèvement
 Du numéro de dossier.
Lorsque le prélèvement est effectué à l’extérieur du laboratoire, les préleveurs externes
disposent de fiche de suivi médical. Il s’agit là d’un document primordial, dont la rédaction
va conditionner l’acceptation ou le refus des échantillons par le laboratoire.
Les éléments suivants sont à renseigner:
 Identification du préleveur, date et heure de prélèvement
 Identification minimaliste du patient : nom, prénom, nom de jeune fille, date de
naissance, sexe, adresse, téléphone et numéro de sécurité sociale
 Renseignements cliniques minimalistes
 Notion de transmission des résultats et d’urgence
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2. Prélèvements sanguins
Déroulement d’un prélèvement sanguin
Etape
Informations
IMPORTANT
Appel et installation du
patient dans la salle de
prélèvement
Demander au patient Nom +
Prénom + Date de naissance
Vérification Identité +
Prescription
Recueil des informations
nécessaires à la réalisation de
l’examen
Nom du prescripteur +
concordance examens prescrits
/ examens saisis
Etat de jeun
Renseignement cliniques
Contexte de la prise de sang
Date de dernières règles
…
Désinfection des mains
Solution hydro alcoolique
Choix des tubes en fonction
de la demande et préparation
du matériel de ponction
Se référer au paragraphe
suivant
Visa du préleveur sur la fiche
de prélèvement attestant les
vérifications suivantes
Noter les informations
nécessaires sur la fiche de
prélèvement
Pose du garrot
Choix de la veine et
désinfection de la zone de
prélèvement
Alcool 70° + coton
Réalisation du prélèvement
Suivre l’ordre de prélèvement
des tubes (se référer au
paragraphe suivant)
Retrait du dispositif de
prélèvement, faire réaliser un
point de compression et poser
le pansement
Elimination des déchets :
l’aiguille et corps de pompe (si
usage unique) dans les DASRI
Identification et vérification
des tubes
Avec les étiquettes sorties à la
saisie du dossier ou au stylo
avec le Nom + Prénom + Date
de naissance
Transmettre les tubes selon
les recommandations de
conservation, ainsi que le
dossier patient pour analyse
Heure de dépôt des
échantillons pour les
prélèvements externes
Desserrer le garrot dès le
premier jet de sang
Attention :
RECAPUCHONNAGE INTERDIT
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L’ensemble de ces éléments (à l’exception du 1er) sont communs aux prélèvements à domicile
et au laboratoire.
Choix des tubes :
Sur le guide de prélèvement fourni avec le manuel et dans le catalogue d’examens
Ordre de prélèvement des tubes :
Figure 2: Ordre de prélèvement des tubes - Recommandations BD
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Protocoles de prélèvements particuliers
Prélèvements pour une hémoculture :



Noter les renseignements nécessaires sur la fiche de renseignement : l’heure du
prélèvement, température du patient au moment du prélèvement ainsi que le
traitement éventuel (antibiotique).
Prendre 1 flacon aérobie et 1 flacon anaérobie ; noter l'heure
Réaliser le prélèvement de préférence lors d'un pic fébrile, à l’aide du dispositif à
ailettes de préférence (ou à défaut à la seringue après une désinfection soignée du site
et des bouchons de chaque flacon) à l’alcool iodé ou à la Bétadine) :

Technique classique au dispositif à ailettes : Prélever la veine avec l’aiguille à
ailettes. Passer les flacons l’un après l’autre (remplir environ 10 ml par flacon).

Prélèvement à la seringue : si veine difficile : Prélever de façon aseptique 20ml de
sang. Introduire stérilement 10ml de sang à travers le centre du bouchon en
caoutchouc de chacun des flacons, en respectant l’ordre suivant : N°1 : Anaérobie, N°
2 : Aérobie.
A la fin du prélèvement, pendant le temps de contention, désinfecter à nouveau les
flacons et repositionner les capsules de protection.
Homogénéiser les flacons par 2 ou 3 retournements.
Conserver à 37°C.



Tests de tolérance au glucose :
Le patient doit être strictement à jeun pour le premier prélèvement.
Pour tous ces tests, les prélèvements peuvent se faire sur :


tube fluoré (à utiliser obligatoirement pour les prélèvements réalisés par les
préleveurs externes)
tube sec avec gel accepté si centrifugation rapide des tubes (c'est-à-dire < 2 heures
après le prélèvement)
Glycémie à jeun et post-prandiale
 Réaliser le premier prélèvement
 Puis réaliser un deuxième prélèvement 1h30 à 2 heures après le début d’un déjeuner
ou un petit déjeuner riche en sucre.
Hyperglycémie provoquée
 Lorsque le patient est à jeun, réaliser le premier prélèvement
 Le patient ingère la quantité de glucose prescrite par le médecin. En absence de
prescription donner au patient 1 g de glucose par kg de poids.
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

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Réaliser à nouveau un prélèvement sur tube sec ou fluoré selon la prescription et
pratiquer en parallèle une prise d’urines au même temps.
Il peut être demandé de faire en même temps un dosage d’insuline : Prélever aux
mêmes temps que précédemment un tube sec avec gel ou héparine lithium.
Dépistage diabète gestationnel (consensus gynécologique)
 Réaliser le premier prélèvement
 Le patient ingère 75 g de glucose.
 Réaliser à nouveau un prélèvement après 60 et 120 minutes le patient étant resté au
repos dans l’intervalle de temps.
Dosage de Cortisol
Sans précision sur la prescription, un prélèvement sur tube sec (bouchon jaune) est réalisé
entre 7h et 9h.
Lorsqu’une analyse est transmise, se reporter au guide du laboratoire spécialisé pour
prendre connaissance des conditions de prélèvement, choix des tubes et conditions de
conservation des échantillons.
3. Recueils urinaires
Préconisations prélèvement pour ECBU :
 Se laver les mains.
 Faire une toilette intime soigneuse à l’aide de la lingette antiseptique fournie.
 Recueillir la fin des urines dans le flacon
 Identifier le flacon avec le nom et prénom si cela n'a pas été fait par le laboratoire et date
et heure du recueil.
Le flacon doit être acheminé au laboratoire dans les plus brefs délais
Cas particulier :
Le sac collecteur pour les enfants :
 Nettoyer soigneusement la peau qui doit être propre et sèche.
 Détacher et jeter la découpe centrale de la poche et retirer le revêtement qui protège
l'adhésif.
 Appliquer en massant pour garantir une bonne adhérence.
 Ne pas dépasser 30 min de pose du sac collecteur.
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

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Pour enlever la poche soulever un coin et détacher doucement. Pour assurer
l'étanchéité coller l'adhésif face contre face, renforcer éventuellement avec un
sparadrap. Éviter le transfert de l'urine dans un autre flacon dans le cas de recueil ne
pouvant être transmis immédiatement au laboratoire.
Rapporter les urines dans les plus brefs délais (< 2h)
Le sondage pour ECBU chez les patients incontinents :
 Respecter les règles d'asepsie (gants et compresses stériles, champ…).
 Utiliser une sonde courte à extrémité arrondie.
 Recueillir l’urine en milieu de jet.
 Enlever la sonde
 Bien préciser sur la fiche de suivi « Sondage »
 Rapporter les urines dans les plus brefs délais (< 2h)
Préconisations pour un prélèvement ADDIS :

3 heures avant le lever habituel :
-Vider la totalité de la vessie dans les toilettes
-Boire ¼ Litre d’eau
-Noter la date et l’heure sur le flacon fourni par le laboratoire
Se recoucher et rester allongé et au repos pendant 3 heures.

3 heures après (le plus exactement possible):
-Uriner dans le flacon fourni par le laboratoire pour recueillir la totalité des urines.
-Noter l’heure sur le flacon.

Identifier le flacon avec les nom et prénom si cela n'a pas été fait par le laboratoire.

Rapporter les urines dans les plus brefs délais
Préconisations pour un prélèvement d’urines sur 24h :
Au lever :

Vider la totalité de la vessie dans les toilettes

Noter sur le flacon : Nom, Prénom, date et heure de début du recueil
Pendant 24h :

Recueillir la totalité des urines émises dans le flacon jusqu’au lendemain à la même
heure du premier recueil.
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La totalité des urines de 24 heures doit être acheminée au laboratoire dans les plus brefs
délais (maximum 6 heures après la fin du recueil).
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Guide pour le recueil et le pré-traitement des urines pour ECBU
Délai de stabilité
< 2h à T°C ambiante
< 2h à T°C ambiante
48h à T°C ambiante
Pré-traitement
Délai de stabilité
Chimie En fonction des
paramètres : Cf Manuel de
prélèvement
48h à T°C ambiante
48h à T°C ambiante
+ Feuille de transmission avec renseignements
+ Heure de recueil et heure de réception
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Chimie  En
fonction des
paramètres :
Cf Manuel de
prélèvement
48h à T°C
48h à T°C
ambiante
ambiante
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4. Prélèvements destinés à la microbiologie et autres
Préconisations et renseignements pour un prélèvement de selles pour une parasitologie
ou une coprologie :
Préconisations :




Recueillir les selles dans un flacon stérile fourni par le laboratoire.
Identifier le flacon avec le nom et prénom et noter la date et l’heure du recueil
Renseigner la fiche de préconisation remise par le secrétariat.
Ramener dans l’heure
Renseignements à obtenir :
 Raison de l'examen ?
 Voyage récent ?
 Traitement antibiotique en cours ?
Préconisations et renseignements pour un prélèvement pour un SCOTCH TEST :
Préconisation :
A effectuer au lever avant la toilette et les premières selles :
 Décoller le scotch de son support.
 Appliquer le coté adhésif sur les plis de la marge anale et le maintenir en appuyant
quelques secondes.
 Retirer le scotch et l’étaler sur la lame support.
 Renouveler l’opération avec le second scotch.
 Replacer les 2 lames dans l’étui.
 Identifier l'étui avec les nom et prénom si cela n'a pas été fait par le laboratoire.
L'étui doit être acheminé au laboratoire dans les plus brefs délais.
Renseignements :
 Date et heure du recueil
Signes cliniques : démangeaisons anales, insomnies ?
Préconisations et renseignements pour un prélèvement vulvo-vaginal
Préconisations:
 Éviter tout rapport sexuel 24 heures avant le test.
 Aucune toilette intime, même superficielle et tout traitement la veille du test.
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 Il est conseillé d'éviter le prélèvement pendant la période menstruelle car la flore est
modifiée (sauf avis contraire du prescripteur).
 Le prélèvement doit être réalisé avant ou à distance de tout traitement antibiotique
(supérieur à 15 jours pour les chlamydiae, supérieur à 5 jours pour les germes banals).
 Éventuellement poser une protection.
Prélèvement :
 En préambule au prélèvement, le biologiste préleveur doit s’assurer des
conditions physiologiques du sujet.
 Après mise en place d’un spéculum à usage unique, prélever/
1 écouvillon pour le prélèvement vaginal
+ 1 écouvillon si demande de recherche de Mycoplasme (sur milieu mousse ou sec
mais pas de gel)
+ 1 écouvillon si demande de recherche de Chlamydiae (sur milieu spécifique)
Le prélèvement, s’il a été pratiqué à l’extérieur, doit être acheminé au laboratoire dans les plus
brefs délais (2 heures au maximum)
S’il a été pratiqué sur milieu de transport, il peut être conservé à température ambiante au
maximum 24 heures.
Renseignement à fournir :
 Femme enceinte ?
 Traitement antibiotique ?
 Stérilet ?
Préconisations et renseignements pour un prélèvement urétral
 Le patient ne doit pas uriner dans les deux heures précédant le prélèvement.
 Prélever avec 1 écouvillon au niveau du méat
+ 1 écouvillon si demande de recherche de Mycoplasme (sur milieu mousse ou sec
mais pas de gel)
+ 1 écouvillon si demande de recherche de Chlamydiae (sur milieu spécifique)
 Pour la recherche de chlamydiae et de mycoplasme : introduire un écouvillon fin
dans l’urètre de 2 à 3 cm en effectuant 3 ou 4 rotations pour recueillir le maximum de
cellules.
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Autres prélèvements bactériologiques
Nature du
prélèvement
Mode de prélèvement

Recherche de
dermatophytes :
Ongles, cheveux,
squames




Plaie, escarre,
larmes, pus profond
etc



Prélever de préférence à la périphérie des
lésions des squames à l’aide d’un
vaccinostyle ou d’une curette
En cas de teigne, épiler les cheveux
Pots stériles
susceptibles d’être atteints
Pour les ongles, couper avec la pince à Vaccinostyle ou
ongle toute la partie de l’ongle atteinte, curette
gratter à la limite de la zone saine avec un
vaccinostyle ou d’une curette
En cas de lésion suintante, écouvillonner
le pus et gratter le plancher de la lésion
Prendre les précautions d’asepsie pour
éviter de contaminer le prélèvement par
les bactéries se trouvant normalement sur
la peau.
Mettre des gants à usage unique
Passer les écouvillons sur toute leur
surface au niveau de la zone prélevée
Noter la prise éventuelle d’antibiotiques.
ORL :
Prélever avant antibiothérapie :



Gorge :
amygdales
Oreille : conduit
auditif externe
Nez / Pharynx

Yeux
 A distance de tout ATB



Matériels
Si abcès fermé :
prélèvement à la
seringue
Si abcès ouvert :
Minimum : 2
écouvillons avec
milieu de transport
1 à 2 écouvillons
au niveau des zones inflammatoires ou stériles avec milieu
nécrotiques
de
à la périphérie des fausses membranes, sur
les amygdales
Éviter de toucher la langue, la luette et la
1 écouvillon par
paroi postérieure du pharynx
œil
Flacon stérile,
Crachat, tubage et/ou Faire le prélèvement avant le lever pour le
acheminé le plus
aspiration
crachat et dans l’heure qui suit le lever pour le
rapidement au
bronchique
tubage
laboratoire
Recherche Dermodix  Arracher plusieurs cils avec les racines
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Manuel de prélèvement
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Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
 Regarder immédiatement au microscope
Préconisations et renseignements pour un test à l’urée marqué HELI-KIT®
Préconisations:
 Avoir arrêté toute antibiothérapie depuis au moins 4 semaines.
 Avoir arrêté tout traitement à base d’inhibiteur de la pompe à protons (IPP) depuis au
moins 2 semaines. Médicaments concernés (liste non exhaustive) : Omeprazole ®,
Mopral ®, Inexium ®, Zoltum ® ou Esomeprazole ®.
 Avoir arrêté de boire, manger ou fumer depuis au moins 6 heures.
 Acheter en pharmacie un test HÉLI-KIT 75 mg ®
 Prendre rendez-vous au laboratoire : le test nécessite votre présence pendant au moins
45 minutes.
 Le prélèvement réalisé, le dosage est envoyé à un laboratoire spécialisé.
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Manuel de prélèvement
Ref : MU-TOUS-PT-021-04
Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Identification des prélèvements
L’absence ou l’erreur d’identification du prélèvement ou de l’échantillon constitue un
critère de non-conformité :
 Celle-ci sera enregistrée comme telle sur le logiciel qualité des laboratoires
 Celle-ci pourra entraîner la non-exécution des actes et apparaîtra en
commentaire sur le compte rendu de résultats.
L’identification des prélèvements passe par :
 L’identification correcte des tubes
 La présence des fiches de suivi (pour un prélèvement au laboratoire) ou des fiches de
prélèvements (pour les prélèvements externes) complétées avec les informations
nécessaires et obligatoires.
Ces éléments sont utilisés pour différencier les homonymes, lier le patient à ses antériorités et
attribuer les valeurs de références adaptées (homme # femme # enfant).
Le technicien réceptionnant l’échantillon au laboratoire vérifie la conformité des échantillons
prélevés par rapport à la prescription ainsi que la présence de l’ensemble des informations
nécessaires et annote la conformité du prélèvement sur la fiche de prélèvement.
A la suite de cette vérification de conformité, le technicien du laboratoire étiquette les tubes
en fonction de la demande enregistrée.
L’ensemble des données recueillies sur le patient, le prélèvement et le préleveur est reporté
dans le dossier informatique du patient.
Attention certains patients peuvent présenter les mêmes noms, prénoms et dates de
naissance, d’où la nécessité de préciser l’adresse et le lieu de naissance, pour la
validation des cartes de groupes sanguins.
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Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Transport
1. Conditions de transport
Le transport des échantillons doit respecter les règles fixées par la réglementation ADR
(Accord européen relatif au transport international des marchandises dangereuses par la
route) et notamment l’instruction p650.
Ainsi notre transport d’échantillon inter site respecte les règles suivantes :
 Triple emballage de l’échantillon biologique
 Identification de l’emballage secondaire ou tertiaire par la mention « MATIÈRE
BIOLOGIQUE CATÉGORIE B » doit être apposée à côté du logo UN 3373.
2. Délais d’acheminement
Les délais d’acheminement fixés par le laboratoire pour chaque examen sont notés dans le
« Catalogue des examens ».
3. Température d’acheminement
En aucun cas les échantillons du jour ne doivent être conservés au réfrigérateur (sauf
indication particulière) ou en plein soleil. La température à respecter est la température
ambiante définie comme comprise entre 15°C et 25°C.
Le laboratoire peut éventuellement donner des bacs réfrigérants aux préleveurs externes en
été.
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Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Hygiène et sécurité
1. Gestion des déchets
Déchets potentiellement contaminés
Les aiguilles à prélèvement ne doivent en aucun cas être recapuchonnées.
Il s’agit des déchets d’activité de soins à risques infectieux (ou DASRI) y compris les restes
d’échantillons analysés, des matériels piquants ou coupants (aiguilles, lames, pipettes pasteur,
seringues …), et les déchets solides des automates.
Ces déchets sont collectés dans les containers en plastique ou carton jaune disponibles en
salle(s) technique(s), les aiguilles étant au préalable collectées dans les containers spécifiques
présents dans chaque salle de prélèvement et dans les mallettes des préleveurs.
Remarque : lors des prélèvements à domicile opérés par le laboratoire, aucun déchet
potentiellement contaminé n’est laissé chez le patient. L’élimination des déchets est sous la
responsabilité du préleveur externe.
Une fois remplis, les containers sont fermés de façon définitive et stockés au laboratoire. Ils
sont ramassés une fois par semaine par une société agréée avec laquelle a été établi un contrat
conventionnel.
Déchets assimilables à des ordures ménagères ne contenant pas d’informations
confidentielles
Il s’agit des papiers ne comportant pas d’informations confidentielles. Leur élimination est
opérée par l’agent d’entretien en vue de leur élimination par les services de la ville.
Déchets assimilables à des ordures ménagères contenant des informations
confidentielles
Il s’agit principalement des fiches de suivi médical, fiches de prélèvement, … . Un broyeur
est mis à la disposition du personnel pour détruire tous les documents à caractère confidentiel.
Ils sont ensuite éliminés par le circuit décrit précédemment.
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2. Incidents de prélèvement
Incidents
Causes
Conduite à tenir
-Garrot trop serré
Hématomes
-Prélèvement difficile (veines
invisibles, trop profondes, veines
très fines, mobiles, ponctions
répétées, début de sclérose).
-Rassurer le patient
-Appliquer un tampon alcoolisé puis
un pansement.
-Comportement anormal du
patient, gestes inconsidérés.
-Garder son calme et retirer
l’aiguille
Malaise sans
perte de
connaissance
-Angoisse
-Jeûne
-Faire comprimer l’endroit de la
ponction avec un tampon par le
patient
-L’allonger, desserrer col, cravate,
ceinture, ne pas couvrir
-Rassurer le patient. Faire respirer à
fond, donner éventuellement de
l’eau, du sucre
-Surveiller ses constantes vitales
-Garder son calme et retirer
l’aiguille
-Anxiété
Perte de
-Jeûne
connaissance du
-Causes médicales
patient
Piqure du nerf
médian
-Placer le patient dans une position
confortable
-Surveiller les constantes vitales
-Faire intervenir un biologiste ou un
personnel titulaire de l’AFGSU.
Contacter les secours si le malaise
persiste.
-Angle de piqûre trop grand
-Arrêt du prélèvement,
-Piqûre trop profonde.
-Appeler le médecin responsable.
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3. Conduite à tenir en cas d’Accident d’Exposition au Sang (AES)
Le préleveur est soumis à un risque de contamination par les virus des hépatites B, C ou Delta
ou par le VIH au contact de liquide biologique (sang, urines, expectoration…).
Cette contamination est possible selon deux modalités :

Soit par une effraction cutanée (piqûre d’aiguilles, blessure…)

Soit par projection sur une muqueuse (bouche, œil), ou sur une peau lésée
Conduite à tenir:
 Immédiatement
En cas de piqûre, blessure ou de contact sur une peau lésée :

Ne pas faire saigner

Nettoyer immédiatement la plaie à l’eau courante et au savon

Rincer abondamment

Désinfecter pendant 5 minutes en immergeant la blessure au Dakin OU à l’eau de
javel à 2,6 % fraîchement diluée au 1/5ème OU à l’alcool 70° OU à la Bétadine
dermique
En cas de projection sur les muqueuses (les yeux, la bouche) :

Rincer abondamment pendant 5 minutes avec de l’eau ou du sérum physiologique
 Dans l’heure qui suit :

Prévenir son responsable

Consulter un service d’urgences médical qui décidera du suivi et des éventuels
traitements à réaliser

Réaliser chaque fois que possible et avec l’accord du sujet source, une prise de sang
prescrite par un médecin, afin d’en connaître le statut sérologique. En cas
d’impossibilité ou de refus, le sujet source sera considéré comme potentiellement
infecté.
 Dans les 24h :

Faire une déclaration d’accident de travail. La piqûre doit faire systématiquement
l’objet d’une déclaration d’accident de service ou de travail selon les modalités légales
afin de préserver les droits de l’agent. Elle permet la prise en charge non seulement de
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Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
la lésion produite immédiatement (piqûre, blessure…) mais aussi les complications
éventuelles et les suites ultérieures (infections…).

Analyser l’accident

Etudier les circonstances de l’accident afin d’éviter qu’il ne se reproduise.
Quelles précautions observer afin d’éviter tout accident ?

Considérer tous les tubes comme potentiellement infectés.

Ni manger, ni boire, ni fumer au laboratoire.

Ne jamais pipeter à la bouche.

Lorsqu’un liquide se répand sur une surface, la désinfecter immédiatement avec de
l’eau de javel à 10 pour cent.

Désinfecter tout objet ou tout appareil contaminé pendant une minute avant de le
nettoyer.

Se laver les mains à chaque fois que l’on quitte le lieu de la manipulation.

Conseiller le port de gants.
Rendu des résultats
Les résultats sont rendus selon 3 modalités :

au patient directement (plusieurs possibilités : exemplaire papier à récupérer au
laboratoire, exemplaire à recevoir par courrier, ou consultation) ;
 aux prescripteurs (par courrier ou télétransmission)
 au laboratoire demandeur de l’examen (par télétransmission sécurisée) ;
Les résultats sont rendus selon les exigences normatives et règlementaires après la validation
biologique et sont sous la responsabilité du biologiste.
Les délais de rendu des résultats sont indiqués au patient au moment du prélèvement en même temps
qu’une carte avec son n° de dossier lui est remise. Le n° de dossier ou les Nom/Prénom/date de
naissance seront demandés pour tout retrait de résultat.
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Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Catalogue des examens
Liste des examens réalisés au laboratoire
Examen
Tube à
prélever
Matrice
utilisée
Stabilité avant
centrifugation
Stabilité après
centrifugation
(6)
Conservation
de
l’échantillon
Post
analytique
Condition et T°c
transport
Préconisation particulière
Délai de
rendu
Tirer une lame si
échantillon transmis le
lendemain ou pour les
échantillons du samedi
J-0 à +1
Tirer une lame si
échantillon transmis le
lendemain ou pour les
échantillons du samedi
J-0 à +1
Hématologie
NF
EDTA
Sang total
24h à T°C
Ambiante
48h réfrigéré
(tirer une lame)
T°c ambiante
Ou
Réfrigéré
(9)
PLAQ
EDTA
Sang total
24h à T°C
Ambiante
48h réfrigéré
(tirer une lame)
T°c ambiante
Ou
Réfrigéré
(9)
VS
EDTA
Sang total
Réticulocytes
EDTA
Sang total
6h à T°C
ambiante
24h entre 2 et
8°C
T°c ambiante
Ou
Réfrigéré
J-0 à +1
(6)
24h à T°C
Ambiante
T°c ambiante
Ou
J-0 à +1
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Examen
Tube à
prélever
Matrice
utilisée
Stabilité avant
centrifugation
Manuel de prélèvement
Stabilité après
centrifugation
(6)
Conservation
de
l’échantillon
Post
analytique
72h entre 2 et
8°C
Ref : MU-TOUS-PT-021-04
Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Condition et T°c
transport
Préconisation particulière
Délai de
rendu
Réfrigéré
(9)
Hémostase
D-Dimères
FIB
Citrate de
sodium
Plasma
citraté
Citrate de
sodium
Plasma
citraté
24h
(3, 4, 5)
24h
(3, 4, 5)
8h T°C
ambiante
Sinon
congeler
8h T°C
ambiante
Sinon
congeler
Tube rempli >80%
T° Ambiante
J-0 à +1
Pose du garrot <1min
Tube rempli >80%
T° Ambiante
J-0 à +1
Pose du garrot <1min
Tube rempli >80%
TCA
TP
Citrate de
sodium
Plasma
citraté
Citrate de
sodium
Plasma
citraté
8h
(3, 4, 5)
24h
(3, 4, 5)
Pose du garrot <1min
4h T°C
ambiante
Sinon
congeler
T° Ambiante
Cas d’un suivi d’un
traitement à l’héparine :
prélèvement à réaliser au
laboratoire
8h T°C
ambiante
Sinon
congeler
T° Ambiante
Ne pas
réfrigérer
Tube rempli >80%
Pose du garrot <1min
J-0 à +1
J-0 à +1
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Examen
AT3
Tube à
prélever
Matrice
utilisée
Stabilité avant
centrifugation
Citrate de
sodium
Plasma
citraté
24h
(3, 4, 5)
Manuel de prélèvement
Stabilité après
centrifugation
(6)
Conservation
de
l’échantillon
Post
analytique
8h T°C
ambiante
Sinon
congeler
Ref : MU-TOUS-PT-021-04
Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Condition et T°c
transport
Préconisation particulière
Délai de
rendu
T° Ambiante
J-0 à +1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
Biochimie
Acide urique
Tube sec
gel
Sérum
Acide urique
urinaire
Flacon à
urine
urine
ASAT
ALAT
Tube sec
gel
Tube sec
gel
Sérum
Sérum
24h
(2,7)
3 jours entre
15 et 25°C
7 jours entre 2
et 8°c
4 jours entre 15 et 25°C
24h
(2,7)
24h
(2,7)
4 jours entre
15 et 25°C
7 jours entre 2
et 8°c
3 jours entre
15 et 25°C
7 jours entre 2
et 8°c
Exempt d'hémolyse
J+1
J+1
29
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Examen
Tube à
prélever
Matrice
utilisée
Albumine
Tube sec
gel
Sérum
Albumine
urinaire
Flacon à
urine
urine
Amylase
Tube sec
gel
Sérum
Amylase urinaire
Flacon à
urine
urine
APOA1
APOB
Tube sec
gel
Tube sec
gel
Stabilité avant
centrifugation
24h
(2,7)
24h
(2,7)
(6)
7 jours entre
15 et 25°C
30 jours entre
2 et 8°c
7 jours entre 2
et 25°c
2 jours entre 15 et 25°C
10 jours entre 2 et 8 °C
(7)
24h
Sérum
Stabilité après
centrifugation
24h à température ambiante
2 jours entre 2 et 8°C
24h
Sérum
Manuel de prélèvement
(7)
24h entre 15
et 25°C
8 jours entre 2
et 8°c
24h entre 15
et 25°C
8 jours entre 2
et 8°c
Ref : MU-TOUS-PT-021-04
Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Conservation
de
l’échantillon
Post
analytique
Condition et T°c
transport
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
7 jours entre 2
et 8°c
7 jours entre 2
et 8°c
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
Préconisation particulière
Délai de
rendu
J+1
J+1
Recueil sans conservateur
J+1
30
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Examen
Bilirubine Totale
Bilirubine
Directe
Tube à
prélever
Tube sec
gel
Tube sec
gel
Matrice
utilisée
Sérum
Sérum
Calcium
Tube sec
gel
Sérum
Calcium urinaire
Flacon à
urine
Urine
Cholestérol HDL
Tube sec
gel
Stabilité avant
centrifugation
8h
Stabilité après
centrifugation
(6)
24h entre 15
et 25°C
7 jours entre 2
et 8°c
8h
3 jours entre
15 et 25°C si
conservée à
l’abri de la
lumière
24h
7 jours entre
15 et 25°C
(2,7)
3 semaines
entre 2 et 8°c
Stable 2 jours entre 15 et 25°C et
4 jours entre 2 et 8°C
24h
Sérum
Manuel de prélèvement
(2,7)
2 jours entre
15 et 25°C
7 jours entre 2
et 8°c
Conservation
de
l’échantillon
Post
analytique
7 jours entre 2
et 8°c
Ref : MU-TOUS-PT-021-04
Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Condition et T°c
transport
T° Ambiante
Préconisation particulière
Protéger les échantillons
de la lumière directe
Délai de
rendu
J+1
Exempt d'hémolyse
Protéger les échantillons
de la lumière directe.
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
Exempt d'hémolyse et de
lipémie
A jeun
J+1
J+1
31
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Examen
Tube à
prélever
Matrice
utilisée
Stabilité avant
centrifugation
24h
Tube sec
gel
Sérum
Chlore
Tube sec
gel
Sérum
Chlore urinaire
Flacon à
urine
urine
CO2 (réserve
alcaline)
Tube sec
gel
Sérum
Créatine Kinase
Tube sec
gel
Sérum
Créatinine
Tube sec
gel
Sérum
Créatinine
urinaire
Flacon à
urine
Urine
CRP
Tube sec
gel
Sérum
Cholestérol Total
Manuel de prélèvement
(2,7)
24h
(7)
Stabilité après
centrifugation
(6)
24h entre 15
et 25°C
(7)
7 jours entre 2
et 8°c
7 jours entre 2
et 25°c
Conservation
de
l’échantillon
Post
analytique
Condition et T°c
transport
Préconisation particulière
Délai de
rendu
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
A jeun
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
T° Ambiante
J+1
7jours entre 2 et 25°C
24h
(7)
24h
(2,7)
24h
(2,7)
24h entre 15
et 25°C
(7)
7 jours entre 2
et 25°c
7 jours entre 2 et 8°C
24h
(2,7)
11 jours entre
15 et 25°C
Ref : MU-TOUS-PT-021-04
Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Exempt d'hémolyse
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
Pas de ré-analyse
Exempt d'hémolyse
J+1
J+1
32
Seule la version électronique fait foi
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Examen
Tube à
prélever
Matrice
utilisée
Stabilité avant
centrifugation
Manuel de prélèvement
Stabilité après
centrifugation
(6)
Ref : MU-TOUS-PT-021-04
Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Conservation
de
l’échantillon
Post
analytique
Condition et T°c
transport
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
Préconisation particulière
Délai de
rendu
2 mois entre 2
et 8°c
Electrophorèses
des protéines
Tube sec
gel
Fer
Tube sec
gel
Sérum
Sérum
Facteur
Rhumatoïde
Tube sec
gel
Sérum
GGT
Tube sec
gel
Sérum
Glucose
Tube
Fluorure
Tube sec
gel
8h
24h
(7)
8h
24h
Plasma
Sérum
7jours entre 2
et 8°C
1 mois
congelé
7 jours entre
15 et 25°C
3 semaines
entre 2 et 8°c
1 Jour entre
20 et 25°C
8 jours entre 2
et 8°c
(7)
7 jours entre 2
et 25°c
24h sur tube
fluorure
48h entre 15
et 25°c
2h sur tube sec
7 jours entre 2
et 8°C
(7)
J+1
Exempt d'hémolyse
A jeun
J+1
J+1
33
Seule la version électronique fait foi
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Tube à
prélever
Matrice
utilisée
Glucose urinaire
Flacon à
urine
Urine
HbA1C
EDTA
Sang total
IGA
Tube sec
gel
Sérum
Examen
IGG
Tube sec
gel
Stabilité avant
centrifugation
Tube sec
gel
Sérum
LDH
Tube sec
gel
Sérum
(6)
Conservation
de
l’échantillon
Post
analytique
Condition et T°c
transport
Préconisation particulière
Délai de
rendu
T° Ambiante
A jeun
J+1
T° Ambiante
Volume minimal : 1.5ml
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
Eviter les échantillons à
forte hémolyse
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
Eviter les échantillons à
forte hémolyse
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
Eviter les échantillons à
forte hémolyse
J+1
T° Ambiante
Eviter les échantillons à
forte hémolyse
J+1
7 jours entre 2 et 8°C
24 heures à T°C ambiante
(7)
8 mois entre 2
et 25°C
24h
4 mois entre
15 et 25°C
(7)
24h
IGM
Stabilité après
centrifugation
2h entre 2 et 25°c
24h
Sérum
Manuel de prélèvement
(7)
5h
8 mois entre 2
et 8°C
2 mois entre
15 et 2°C
4 mois entre 2
et 8°C
7 jours entre
15 et 25°C
Ref : MU-TOUS-PT-021-04
Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
4 jours entre 2
34
Seule la version électronique fait foi
LBM iLAB MONTAUROUX
LE PLAN ORIENTAL
RD562
83440 MONTAUROUX
Examen
Tube à
prélever
Matrice
utilisée
Stabilité avant
centrifugation
Manuel de prélèvement
Stabilité après
centrifugation
(6)
Ref : MU-TOUS-PT-021-04
Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Conservation
de
l’échantillon
Post
analytique
Condition et T°c
transport
Préconisation particulière
Délai de
rendu
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
Eviter les échantillons à
forte hémolyse ou ictère
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
Eviter les échantillons à
forte hémolyse
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
Eviter les échantillons à
forte hémolyse
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
Eviter les échantillons à
forte hémolyse
J+1
et 8°C
24h
Lipase
Tube sec
gel
Sérum
Magnésium
Tube sec
gel
Sérum
Magnésium
urinaire
Flacon à
urine
Urine
Micro albumine
Flacon à
urine
Urine
Phosphatase
alcaline
Tube sec
gel
Sérum
Phosphore
Tube sec
gel
(7)
24h
(7)
3 semaines
entre 2 et 8°c
7 jours entre
15 et 25°C
3 jours entre 2 et 8°C
24h entre 15 et 25°C
1 mois entre 2 et 8°C
24h
Sérum
7 jours entre
15 et 25°C
(7)
7 jours entre 2
et 25°c
24h
24h entre 15
et 25°C
(7)
4 jours entre 2
et 8°c
35
Seule la version électronique fait foi
LBM iLAB MONTAUROUX
LE PLAN ORIENTAL
RD562
83440 MONTAUROUX
Examen
Phosphore
urinaire
Tube à
prélever
Matrice
utilisée
Flacon à
urine
Urine
Potassium
Tube sec
gel
Sérum
Potassium
urinaire
Flacon à
urine
Urine
Stabilité avant
centrifugation
Tube sec
gel
Sérum
Protéines
urinaires
Flacon à
urine
Urine
Sodium
Tube sec
gel
Sérum
Sodium urinaire
Flacon à
urine
Urine
Stabilité après
centrifugation
(6)
Stable 24h entre 2 et 8°c
5h
6 semaines
entre 2 et
25°C si séparé
des cellules
45 jours entre 15 et 25°C
2 mois entre 2 et 8°c
24h
Protéines totales
Manuel de prélèvement
(7)
6 jours entre
15 et 25°C
4 semaines
entre 2 et 8°c
12 à 24h à T° Ambiante
48h entre 2 et 8°C
24h
(7)
14 jours entre
2 et 25°C
45 jours entre 2 et 25°c
Ref : MU-TOUS-PT-021-04
Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Conservation
de
l’échantillon
Post
analytique
Condition et T°c
transport
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
Préconisation particulière
Délai de
rendu
J+1
Exempt d'hémolyse
Exempt d'hémoyse
J+1
J+1
J+1
36
Seule la version électronique fait foi
LBM iLAB MONTAUROUX
LE PLAN ORIENTAL
RD562
83440 MONTAUROUX
Examen
Transferrine
Tube à
prélever
Tube sec
gel
Matrice
utilisée
Stabilité avant
centrifugation
24h
Sérum
(7)
24h
Triglycérides
Tube sec
gel
Sérum
Urée
Tube sec
gel
Sérum
Urée urinaire
Flacon à
urine
Urine
(7)
24h
(7)
Manuel de prélèvement
Stabilité après
centrifugation
(6)
4 mois entre
15 et 25°C
8 mois entre 2
et 8°C
24h entre 15
et 25°C
7 jours entre 2
et 8°c
7 jours entre 2
et 25°C
Ref : MU-TOUS-PT-021-04
Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Conservation
de
l’échantillon
Post
analytique
Condition et T°c
transport
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
A jeun
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
Eviter les échantillons à
forte hémolyse
J+1
Stable 2 jours à T°c ambiante et 7jours entre 2 et
8°c
T° Ambiante
Préconisation particulière
Délai de
rendu
J+1
J+1
Immunologie / Sérologie Infectieuse / Auto-Immunité / Allergologie
Attention : les tubes doivent être complètement remplis
AFP
Tube sec
gel
Sérum
8h
8h à T°C
ambiante
48h entre 2 et
8°C
Au-delà,
congeler
Sérothèque
congelée 1 an
T° Ambiante
J+1
37
Seule la version électronique fait foi
LBM iLAB MONTAUROUX
LE PLAN ORIENTAL
RD562
83440 MONTAUROUX
Examen
Tube à
prélever
Matrice
utilisée
Stabilité avant
centrifugation
Anticorps HBc
Tube sec
gel
Anticorps HBS
Tube sec
gel
Antigène HBS
Tube sec
gel
Sérum
8h
Anticorps HCV
Tube sec
gel
Sérum
8h
Anti- TPO
Tube sec
Sérum
8h
Sérum
Sérum
8h
8h
Manuel de prélèvement
Stabilité après
centrifugation
(6)
8h à T°C
ambiante
48h entre 2 et
8°c
8h à T°C
ambiante
4 jours entre 2
et 8°C
Au-delà,
congeler
8h à T°C
ambiante
4 jours entre 2
et 8°C
Au-delà,
congeler
Au-delà,
congeler
8h à T°C
ambiante
48h entre 2 et
8°c
Au-delà,
congeler
8h à T°C
ambiante
Ref : MU-TOUS-PT-021-04
Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Conservation
de
l’échantillon
Post
analytique
Condition et T°c
transport
Sérothèque
congelée 1 an
T° Ambiante
Préconisation particulière
Délai de
rendu
J+1
T° Ambiante
Si analyse >8h après le
prélèvement, re
centrifuger pendant 15
min à 3000g
J+1
Sérothèque
congelée 1 an
T° Ambiante
Si analyse >8h après le
prélèvement, re
centrifuger pendant 15
min à 3000g
J+1
Sérothèque
congelée 1 an
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
T° Ambiante
J+1
Sérothèque
congelée 1 an
38
Seule la version électronique fait foi
LBM iLAB MONTAUROUX
LE PLAN ORIENTAL
RD562
83440 MONTAUROUX
Examen
Tube à
prélever
Matrice
utilisée
Stabilité avant
centrifugation
gel
Anti-Tg
BNP
CA 125
Tube sec
gel
Tube EDTA
Tube sec
gel
Sérum
Plasma
Sérum
8h
5h
24h
(2)
Manuel de prélèvement
Stabilité après
centrifugation
(6)
48h entre 2 et
8°C
Au-delà,
congeler
8h à T°C
ambiante
48h entre 2 et
8°C
Au-delà,
congeler
3h à
température
ambiante
8h entre 2 et
8°C
>8h : à
congeler
(pendant
60jours max)
8h à T°C
ambiante
48h entre 2 et
8°C
Au-delà,
congeler
Conservation
de
l’échantillon
Post
analytique
Ref : MU-TOUS-PT-021-04
Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Condition et T°c
transport
Préconisation particulière
Délai de
rendu
et 8°c
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
T° Ambiante
ou
Réfrigéré
Sérothèque
congelée 1 an
T° Ambiante
J+1
39
Seule la version électronique fait foi
LBM iLAB MONTAUROUX
LE PLAN ORIENTAL
RD562
83440 MONTAUROUX
Examen
Tube à
prélever
Matrice
utilisée
Stabilité avant
centrifugation
24h
CA 19-9
Tube sec
gel
Sérum
CA 15-3 II
Tube sec
gel
Sérum
8h
CEA
Tube sec
gel
Sérum
8h
Cortisol
Tube sec
gel
Sérum
CMV IgG
Tube sec
Sérum
(2)
24h
(7)
8h
Manuel de prélèvement
Stabilité après
centrifugation
(6)
8h à T°C
ambiante
48h entre 2 et
8°C
Au-delà,
congeler
8h à T°C
ambiante
48h entre 2 et
8°C
Au-delà,
congeler
8h à T°C
ambiante
48h entre 2 et
8°C
Au-delà,
congeler
8h à T°C
ambiante
48h entre 2 et
8°C
Au-delà,
congeler
5 jours entre 2
et 8°C
Ref : MU-TOUS-PT-021-04
Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Conservation
de
l’échantillon
Post
analytique
Condition et T°c
transport
Sérothèque
congelée 1 an
T° Ambiante
J+1
Sérothèque
congelée 1 an
T° Ambiante
J+1
Sérothèque
congelée 1 an
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
Sérothèque
T° Ambiante
Préconisation particulière
Noter l'heure du
prélèvement
Délai de
rendu
J+1
J+1
40
Seule la version électronique fait foi
LBM iLAB MONTAUROUX
LE PLAN ORIENTAL
RD562
83440 MONTAUROUX
Examen
Tube à
prélever
Matrice
utilisée
Stabilité avant
centrifugation
Manuel de prélèvement
Stabilité après
centrifugation
(6)
gel
Conservation
de
l’échantillon
Post
analytique
Ref : MU-TOUS-PT-021-04
Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Condition et T°c
transport
Préconisation particulière
Délai de
rendu
congelée 1 an
CMV IgM
Tube sec
gel
Sérum
8h
5 jours entre 2
et 8°C
Sérothèque
congelée 1 an
T° Ambiante
EBV
Tube sec
gel
Sérum
8h
5 jours entre 2
et 8°C
Sérothèque
congelée 1 an
T° Ambiante
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
Eviter les échantillons à
forte hémolyse
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
Eviter les échantillons à
forte hémolyse
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
Sérothèque
congelée 1 an
T° Ambiante
J+1
Ferritine
Tube sec
gel
Sérum
8h
Folate III
Tube sec
gel
Sérum
8h
FSH
Tube sec
gel
Sérum
8h
HCG
Tube sec
gel
Sérum
24h
(7)
8h à T°C
ambiante
48h entre 2 et
8°C
Au-delà,
congeler
8h Réfrigéré
>8h : à
congeler
8h à T°C
ambiante
48h entre 2 et
8°C
Au-delà,
congeler
8h à T°C
ambiante
48h entre 2 et
J+1
41
Seule la version électronique fait foi
LBM iLAB MONTAUROUX
LE PLAN ORIENTAL
RD562
83440 MONTAUROUX
Examen
Tube à
prélever
Matrice
utilisée
Stabilité avant
centrifugation
Manuel de prélèvement
Stabilité après
centrifugation
(6)
Ref : MU-TOUS-PT-021-04
Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Conservation
de
l’échantillon
Post
analytique
Condition et T°c
transport
Sérothèque
congelée 1 an
T° Ambiante
J+1
Sérothèque
congelée 1 an
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
Préconisation particulière
Délai de
rendu
8°C
Au-delà,
congeler
HEP A-IgM/ IgG
Tube sec
gel
Sérum
8h
HIV
Tube sec
gel
Sérum
8h
IgE
Tube sec
gel
Sérum
24h
LH
Tube sec
gel
Sérum
Myoglobine
Tube sec
gel
Sérum
24h
(7)
24h
(7)
7 jours entre 2
et 8°C
24h à T°C
ambiante
8 jours entre 2
et 8°C
Au-delà,
congeler
5 jours entre 2
et 8°C
2 mois
congelé
8h à T°C
ambiante
48h entre 2 et
8°C
Au-delà,
congeler
42
Seule la version électronique fait foi
LBM iLAB MONTAUROUX
LE PLAN ORIENTAL
RD562
83440 MONTAUROUX
Examen
β2
microglobuline
Tube à
prélever
Tube sec
gel
Matrice
utilisée
Sérum
Stabilité avant
centrifugation
24h
24h
Œstrogène
Tube sec
gel
Sérum
Pro-BNP
Tube sec
gel
Sérum
8h
Progestérone
Tube sec
gel
Sérum
24h
Prolactine
Tube sec
gel
Sérum
8h
Manuel de prélèvement
Stabilité après
centrifugation
(6)
5 jours entre 2
et 8°C
1 an congelé
8h à T°C
ambiante
14 jours entre
2 et 8°C
Au-delà,
congeler
4 jours entre 2
et 8°C
6 mois
congelé
8h à T°C
ambiante
48h entre 2 et
8°C
Au-delà,
congeler
8h à T°C
ambiante
48h entre 2 et
8°C
Au-delà,
congeler
Ref : MU-TOUS-PT-021-04
Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Conservation
de
l’échantillon
Post
analytique
Condition et T°c
transport
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
Préconisation particulière
Délai de
rendu
J+1
43
Seule la version électronique fait foi
LBM iLAB MONTAUROUX
LE PLAN ORIENTAL
RD562
83440 MONTAUROUX
Examen
Tube à
prélever
Matrice
utilisée
Stabilité avant
centrifugation
24h
PSA Total
Tube sec
gel
Sérum
3h si combiné
au PSA Libre
(6)
3h
PSA Libre
Tube sec
gel
Sérum
PTH
Tube sec
gel
Sérum
5h
Rubéole IgG
Tube sec
gel
Sérum
8h
SDHA
Tube sec
gel
Sérum
8h
(6)
Manuel de prélèvement
Stabilité après
centrifugation
(6)
24h entre 2 et
8°C
>24h : à
congeler
24h entre 2 et
8°C
>24h : à
congeler
4h à T°C
ambiante
8h entre 2 et
8°C
Au-delà,
congeler
8h à T°C
ambiante
48h entre 2 et
8°C
Au-delà,
congeler
8h à T°C
ambiante
48h entre 2 et
8°C
Ref : MU-TOUS-PT-021-04
Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Conservation
de
l’échantillon
Post
analytique
Condition et T°c
transport
Préconisation particulière
Délai de
rendu
Sérothèque
congelée 1 an
T° Ambiante
Si combiné au PSA libre,
centrifuger et réfrigérer
dans les 3h
J+1
Sérothèque
congelée 1 an
T° Ambiante
centrifuger et réfrigérer
dans les 3h
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
Sérothèque
congelée 1 an
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
44
Seule la version électronique fait foi
LBM iLAB MONTAUROUX
LE PLAN ORIENTAL
RD562
83440 MONTAUROUX
Examen
Tube à
prélever
Matrice
utilisée
Stabilité avant
centrifugation
24h
T3 Libre
Tube sec
gel
Sérum
T4 Libre
Tube sec
gel
Sérum
Testostérone
Tube sec
gel
Sérum
Thyroglobuline
Tube sec
gel
Sérum
(7)
24h
(7)
24h
(7)
24h
(2)
Manuel de prélèvement
Stabilité après
centrifugation
(6)
Au-delà,
congeler
8h à T°C
ambiante
48h entre 2 et
8°C
Au-delà,
congeler
8h à T°C
ambiante
48h entre 2 et
8°C
Au-delà,
congeler
8h à T°C
ambiante
48h entre 2 et
8°C
Au-delà,
congeler
8h à T°C
ambiante
48h entre 2 et
8°C
Au-delà,
congeler
Ref : MU-TOUS-PT-021-04
Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Conservation
de
l’échantillon
Post
analytique
Condition et T°c
transport
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
Préconisation particulière
Délai de
rendu
45
Seule la version électronique fait foi
LBM iLAB MONTAUROUX
LE PLAN ORIENTAL
RD562
83440 MONTAUROUX
Examen
Tube à
prélever
Matrice
utilisée
Stabilité avant
centrifugation
Toxoplasme IgM
Tube sec
gel
Sérum
8h
Toxoplasme IgG
Tube sec
gel
Sérum
8h
Troponine I
Tube EDTA
Plasma
8h
24h
TSH
Tube sec
gel
Sérum
Vitamine D (25OH)
Tube sec
gel
Sérum
(7)
24h
(7)
Manuel de prélèvement
Stabilité après
centrifugation
(6)
8h à T°C
ambiante
48h entre 2 et
8°C
Au-delà,
congeler
8h à T°C
ambiante
4 jours entre 2
et 8°C
Au-delà,
congeler
8h à T°C
ambiante
48h entre 2 et
8°C
Au-delà,
congeler
72h T°C
ambiante
7 jours entre 2
et 8°C
Au-delà,
Ref : MU-TOUS-PT-021-04
Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Conservation
de
l’échantillon
Post
analytique
Condition et T°c
transport
Sérothèque
congelée 1 an
T° Ambiante
Ou Réfrigéré
Préconisation particulière
Délai de
rendu
J+1
Sérothèque
congelée 1 an
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
J+1
46
Seule la version électronique fait foi
LBM iLAB MONTAUROUX
LE PLAN ORIENTAL
RD562
83440 MONTAUROUX
Examen
Vitamine B12
Tube à
prélever
Tube sec
gel
Matrice
utilisée
Stabilité avant
centrifugation
24h
Sérum
(7)
Manuel de prélèvement
Stabilité après
centrifugation
(6)
congeler
8h à T°C
ambiante
48h entre 2 et
8°C
Au-delà,
congeler
Ref : MU-TOUS-PT-021-04
Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Conservation
de
l’échantillon
Post
analytique
Condition et T°c
transport
7 jours entre 2
et 8°c
T° Ambiante
Préconisation particulière
Délai de
rendu
J+1
Immuno-hématologie
Sous-traitée à l’EFS
Groupes
sanguins /
Phénotype
2 EDTA
Volume minimum: 1,5ml
Plasma +
culot
globulaire
24h
T° Ambiante
Tubes EDTA à prélever sur
2 prélèvements différents
réception
avant midi
Plasma
24h
T° Ambiante
Volume minimum: 1,5ml
réception
avant midi
J+1 si
1 EDTA
RAI
(si
demandé
avec
groupe
sanguin,
utiliser les
tubes pris
pour les
J+1 si
47
Seule la version électronique fait foi
LBM iLAB MONTAUROUX
LE PLAN ORIENTAL
RD562
83440 MONTAUROUX
Examen
Tube à
prélever
Matrice
utilisée
Stabilité avant
centrifugation
Manuel de prélèvement
Stabilité après
centrifugation
(6)
Conservation
de
l’échantillon
Post
analytique
Ref : MU-TOUS-PT-021-04
Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Condition et T°c
transport
Préconisation particulière
Délai de
rendu
groupes)
Techniques manuelles
ASO/ASDO
Tube sec
gel
Helicobacter
pylori
Tube sec
gel
Procalcitonine
Syphilis
WALER-ROSE
Tube sec
gel
Sérum
Sérum
Sérum
24h
24h
24h
24h entre 2 et
8°C
4 semaines
congeler
3 jours entre 2
et 8°C
Si dosage
>24h après le
prélèvement
 congeler
7 jours entre
2 et 8°C
Tube sec
gel
Sérum
Tube sec
Sérum
24h
Sinon,
congeler
24h
2 jours à T°C
ambiante
T°c ambiante ou
Réfrigéré
J-0
2 jours à T°C
ambiante
T°c ambiante
J-0
2 jours à T°C
ambiante
T°c ambiante
J-0
T°c ambiante
Lundi /
Mercredi
/
Vendredi
2 jours à T°C
ambiante
2 jours à T°C
Absence d’hémolyse ou
d’échantillon lipémique
Absence d’hémolyse ou
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Examen
Tube à
prélever
Matrice
utilisée
Manuel de prélèvement
Stabilité avant
centrifugation
Stabilité après
centrifugation
(6)
gel
Examen
Conservation
de
l’échantillon
Post
analytique
Ref : MU-TOUS-PT-021-04
Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Condition et T°c
transport
ambiante
Type de
récipient
Matrice utilisée
Stabilité avant
analyse
Conservation de
l’échantillon
Post analytique
Préconisation particulière
Délai de
rendu
d’échantillon lipémique
Condition et T°C
de transport
Préconisation
particulière
Délai de
rendu
T° Ambiante
Demander au
patient de
rapporter
l’échantillon dans
les plus brefs délais
(conservation
réfrigérée AU
LABORATOIRE)
J+3
T° Ambiante
Ne pas réfrigérer
J+1 à 2
Crachats du matin
non salivaire
J+3
Bactériologie / Parasitologie / Mycologie / Spermiologie
Coproculture
culture
Flacon à selles
Selles
Dans les 4h à
température
ambiante
12h entre 2 et
8°C
Les cultures
sont conservées
3 jours dans le
cas d’un
développement
tardif des
germes
ECBU
Flacon stérile
boraté
Flacon stérile
sans borate
Urines
48h sur flacon
boraté
1h sur flacon
non boraté
Expectoration
Flacon stérile
crachats
Dans les 2h
T° Ambiante
Prélèvements
vaginaux
Ecouvillons sur
milieu de
transport
Sécrétions
vaginales
Dans les 24h
T° Ambiante
J+3
49
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Identification
Dermathophytes
Parasitologie
Flacon stérile ou
écouvillon sur
milieu de
transport
Flacon à selles
Sang dans les
selles
Flacon à selles
Autre
prélèvement
Ecouvillon sur
milieu de
transport
Ref : MU-TOUS-PT-021-04
Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Manuel de prélèvement
Peau/ Phanère
Dans les 4h
T° Ambiante
selles
Dans les plus
brefs délais
(<3h) pour l’état
frais
24h entre 2 et
8°C pour la
concentration
T° Ambiante
Selles
Dans les 4h à
T°C ambiante
72h entre 2 et
8°c
T° Ambiante
Dans les 24h
T° Ambiante
J+20
Demander au
patient de
rapporter
l’échantillon dans
les plus brefs délais
(conservation
réfrigérée AU
LABORATOIRE)
Demander au
patient de
rapporter
l’échantillon dans
les plus brefs délais
(conservation
réfrigérée AU
LABORATOIRE)
J+1
J+1
J+3
Examens envoyés à Cerba- Voir le « Catalogue des analyses » ou téléphoner au laboratoire
Pour les examens ne figurant pas dans la liste, contacter le laboratoire afin de connaître les modalités de prélèvement et d’acheminement.
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Manuel de prélèvement
Ref : MU-TOUS-PT-021-04
Version : 04
Applicable le : 10-12-2015
Références bibliographiques :
1.
2.
3.
HbA1c Reagent - Instruction for use, AFSSAPS 2006
Etude de stabilité analytes, OMS 2002
Collection, Transport, and Processing of Blood Specimens for Testing Plasma-Based Coagulation Assays
and Molecular Hemostasis Assays; Approved Guideline - CLSI – 2008
4. Stability of coagulation assays performed in plasma from citrated whole blood transported at ambient
temperature – Zurcher, Sulzer, Barizzi, Lämmle, Alberio – 2008
5. Stabilité pré-analytique des paramètres de la coagulation : revue des données disponibles – Annales de
biologie Clinic - Mauge, Alhenc-Gelas – 2014
6. Fiches techniques fournisseurs : STAGO, BECKMAN
7. Stability study of 81 analytes in human whole blood, in serum and in plasma Christiane Oddoze , Elise
Lombard, Henri Portugal - Clinical Biochemistry 45 (2012) 464–469
TM
8. Note technique: Stabilité des paramètres sur tubes BD SST II - Juillet 2009
9. Spécifications de performance et caractéristiques du DxH 800 – 2013 BECKMAN COULTER
th
10. WHO laboratory manuel for the Examination an processing of human semen, 5 edition – 2010 WHO
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